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GB 5009.24-2016

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GB 5009.24-2016 英文版 320 购买 现货,9秒内自动发货PDF,有增值税发票。 食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素M族的测定 有效

   
标准编号: GB 5009.24-2016 (GB5009.24-2016)
中文名称: 食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素M族的测定
英文名称: National food safety standard Determination of aflatoxins M1 and B1 in foods
行业: 国家标准
中标分类: X09
字数估计: 22,228
发布日期: 2016-12-23
实施日期: 2017-06-23
旧标准 (被替代): GB 5009.24-2010部分; GB 5413.37-2010; GB/T 23212-2008部分; SN/T 1664-2005部分
标准依据: National Health and Family Planning Commission Notice No.17 of 2016
发布机构: 中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局、中国国家标准化管理委员会

GB 5009.24-2016
National Food Safety Standard -- Determination of M Aflatoxins in Foods
中华人民共和国国家标准
食品安全国家标准
食品中黄曲霉毒素 M族的测定
2016-12-23发布
2017-06-23实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会
国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局 发 布
前言
本标准代替 GB 5413.37-2010《食品安全国家标准 乳和乳制品中黄曲霉毒素 M1的测定》、
GB5009.24-2010《食品安全国家标准食品中黄曲霉毒素M1和B1的测定》、GB/T23212-2008《牛
奶和奶粉中黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2、M1、M2的测定 高效液相色谱法-荧光检测法》和SN/T 1664-
2005《牛奶和奶粉中黄曲霉毒素 M1、B1、B2、G1、G2 含量的测定》。
本标准与 GB 5413.37-2010相比,主要变化如下:
---标准名称修改为“食品安全国家标准食品中黄曲霉毒素M族的测定”;
---增加了方法适用范围;
---增加了对黄曲霉毒素 M2的检测;
---修改了酶联免疫法,并修改第三法名称为酶联免疫吸附筛查法;
---修改了液相色谱-质谱联用法;
---修改了液相色谱法的前处理方法;
---删除了免疫层析净化荧光分光度法。
食品安全国家标准
食品中黄曲霉毒素 M族的测定
1 范围
本标准规定了食品中黄曲霉毒素 M1和黄曲霉毒素 M2(以下简称 AFT M1和 AFT M2)的测定
方法。
第一法为同位素稀释液相色谱-串联质谱法,适用于乳、乳制品和含乳特殊膳食用食品中AFTM1
和AFTM2的测定。
第二法为高效液相色谱法,适用范围同第一法。
第三法为酶联免疫吸附筛查法,适用于乳、乳制品和含乳特殊膳食用食品中AFTM1的筛查测定。
第一法 同位素稀释液相色谱-串联质谱法
2 原理
试样中的黄曲霉毒素 M1和黄曲霉毒素 M2用甲醇-水溶液提取,上清液用水或磷酸盐缓冲液稀释
后,经免疫亲和柱净化和富集,净化液浓缩、定容和过滤后经液相色谱分离,串联质谱检测,同位素内标
法定量。
3 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 试剂
3.1.1 乙腈(CH3CN):色谱纯。
3.1.2 甲醇(CH3OH):色谱纯。
3.1.3 乙酸铵(CH3COONH4)。
3.1.4 氯化钠(NaCl)。
3.1.5 磷酸氢二钠(Na2HPO4)。
3.1.6 磷酸二氢钾(KH2PO4)。
3.1.7 氯化钾(KCl)。
3.1.8 盐酸(HCl)。
3.1.9 石油醚(CnH2n+2):沸程为30℃~60℃。
3.2 试剂配制
3.2.1 乙酸铵溶液(5mmol/L):称取0.39g乙酸铵,溶于1000mL水中,混匀。
3.2.2 乙腈-水溶液(25+75):量取250mL乙腈加入750mL水中,混匀。
3.2.3 乙腈-甲醇溶液(50+50):量取500mL乙腈加入500mL甲醇中,混匀。
3.2.4 磷酸盐缓冲溶液(以下简称PBS):称取8.00g氯化钠、1.20g磷酸氢二钠(或2.92g十二水磷酸
氢二钠)、0.20g磷酸二氢钾、0.20g氯化钾,用900mL水溶解后,用盐酸调节pH 至7.4,再加水至
1000mL。
3.3 标准品
3.3.1 AFTM1标准品(C17H12O7,CAS:6795-23-9):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书
的标准物质。
3.3.2 AFTM2标准品(C17H14O7,CAS:6885-57-0):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书
的标准物质。
3.3.3 13C17-AFTM1同位素溶液(C17H14O7):0.5μg/mL。
3.4 标准溶液配制
3.4.1 标准储备溶液(10μg/mL):分别称取AFTM1和AFTM21mg(精确至0.01mg),分别用乙腈
溶解并定容至100mL。将溶液转移至棕色试剂瓶中,在-20℃下避光密封保存。临用前进行浓度校
准(校准方法参见附录A)。
3.4.2 混合标准储备溶液(1.0μg/mL):分别准确吸取10μg/mLAFTM1和AFTM2标准储备液1.00mL
于同一10mL容量瓶中,加乙腈稀释至刻度,得到1.0μg/mL的混合标准液。此溶液密封后避光4℃
保存,有效期3个月。
3.4.3 混合标准工作液(100ng/mL):准确吸取混合标准储备溶液(1.0μg/mL)1.00mL至10mL容
量瓶中,乙腈定容。此溶液密封后避光4℃下保存,有效期3个月。
3.4.4 50ng/mL同位素内标工作液1(13C17-AFTM1):取AFTM1同位素内标(0.5μg/mL)1mL,用
乙腈稀释至10mL。在-20℃下保存,供测定液体样品时使用。有效期3个月。
3.4.5 5ng/mL同位素内标工作液2(13C17-AFTM1):取AFTM1同位素内标(0.5μg/mL)100μL,用
乙腈稀释至10mL。在-20℃下保存,供测定固体样品时使用。有效期3个月。
3.4.6 标准系列工作溶液:分别准确吸取标准工作液5μL、10μL、50μL、100μL、200μL、500μL至
10mL容量瓶中,加入100μL50ng/mL的同位素内标工作液,用初始流动相定容至刻度,配制AFT
M1和AFTM2的浓度均为0.05ng/mL、0.1ng/mL、0.5ng/mL、1.0ng/mL、2.0ng/mL、5.0ng/mL的
系列标准溶液。
4 仪器和设备
4.1 天平:感量0.01g、0.001g和0.00001g。
4.3 涡旋混合器。
4.4 超声波清洗器。
4.5 离心机:≥6000r/min。
4.6 旋转蒸发仪。
4.7 固相萃取装置(带真空泵)。
4.8 氮吹仪。
4.9 液相色谱-串联质谱仪:带电喷雾离子源。
4.10 圆孔筛:1mm~2mm孔径。
4.11 玻璃纤维滤纸:快速,高载量,液体中颗粒保留1.6μm。
使用)。
4.13 免疫亲和柱:柱容量≥100ng(柱容量、回收率、柱回收率验证方法参见附录B)。
注:对于每个批次的亲和柱在使用前需进行质量验证。
5 分析步骤
使用不同厂商的免疫亲和柱,在样品的上样、淋洗和洗脱的操作方面可能略有不同,应该按照供应
商所提供的操作说明书要求进行操作。
警示:整个分析操作过程应在指定区域内进行。该区域应避光(直射阳光),具备相对独立的操作台
和废弃物存放装置。在整个实验过程中,操作者应按照接触剧毒物的要求采取相应的保护措施。
5.1 样品提取
称取4g混合均匀的试样(精确到0.001g)于50mL离心管中,加入100μL13C17-AFTM1内标溶
液(5ng/mL)振荡混匀后静置30min,加入10mL甲醇,涡旋3min。置于4℃、6000r/min下离心
10min或经玻璃纤维滤纸过滤,将适量上清液或滤液转移至烧杯中,加40mL水或PBS稀释,备用。
5.1.2 乳粉、特殊膳食用食品
称取1g样品(精确到0.001g)于50mL离心管中,加入100μL13C17-AFTM1内标溶液(5ng/
mL)振荡混匀后静置30min,加入4mL50℃热水,涡旋混匀。如果乳粉不能完全溶解,将离心管置于
50℃的水浴中,将乳粉完全溶解后取出。待样液冷却至20℃后,加入10mL甲醇,涡旋3min。置于
4℃、6000r/min下离心10min或经玻璃纤维滤纸过滤,将适量上清液或滤液转移至烧杯中,加40mL
水或PBS稀释,备用。
称取1g样品(精确到0.001g)于50mL离心管中,加入100μL13C17-AFTM1内标溶液(5ng/
mL)振荡混匀后静置30min,加入8mL石油醚,待奶油溶解,再加9mL水和11mL甲醇,振荡
30min,将全部液体移至分液漏斗中。加入0.3g氯化钠充分摇动溶解,静置分层后,将下层移到圆底
烧瓶中,旋转蒸发至10mL以下,用PBS稀释至30mL。
5.1.4 奶酪
称取1g已切细、过孔径1mm~2mm圆孔筛混匀样品(精确到0.001g)于50mL离心管中,加
100μL13C17-AFTM1内标溶液(5ng/mL)振荡混匀后静置30min,加入1mL水和18mL甲醇,振荡
30min,置于4℃、6000r/min下离心10min或经玻璃纤维滤纸过滤,将适量上清液或滤液转移至圆
底烧瓶中,旋转蒸发至2mL以下,用PBS稀释至30mL。
5.2.1 免疫亲和柱的准备
将低温下保存的免疫亲和柱恢复至室温。
5.2.2 净化
免疫亲和柱内的液体放弃后,将上述样液移至50mL注射器筒中,调节下滴流速为1mL/min~
3mL/min。待样液滴完后,往注射器筒内加入10mL水,以稳定流速淋洗免疫亲和柱。待水滴完后,
用真空泵抽干亲和柱。脱离真空系统,在亲和柱下放置10mL刻度试管,取下50mL的注射器筒,加入
2×2mL乙腈(或甲醇)洗脱亲和柱,控制1mL/min~3mL/min下滴速度,用真空泵抽干亲和柱,收集
全部洗脱液至刻度试管中。在50℃下氮气缓缓地将洗脱液吹至近干,用初始流动相定容至1.0mL,涡
旋30s溶解残留物,0.22μm滤膜过滤,收集滤液于进样瓶中以备进样。
在避光(直射阳光)条件下进行。
5.3 液相色谱参考条件
液相色谱参考条件列出如下:
a) 液相色谱柱:C18柱(柱长100mm,柱内径2.1mm,填料粒径1.7μm),或相当者。
b) 色谱柱柱温:40℃。
c) 流动相:A相,5mmol/L乙酸铵水溶液;B相,乙腈-甲醇(50+50)。梯度洗脱:参见表1。
d) 流速:0.3mL/min。
e) 进样体积:10μL。
5.4 质谱参考条件
a) 检测方式:多离子反应监测(MRM);
b) 离子源控制条件:参见表2;
c) 离子选择参数:见表3;
d) 液相色谱-质谱图和子离子扫描图:见附录C。
表1 液相色谱梯度洗脱条件
时间/min 流动相A/% 流动相B/% 梯度变化曲线
0.0 68.0 32.0 -
0.5 68.0 32.0 1
4.2 55.0 45.0 6
5.7 0.0 100.0 1
6.0 68.0 32.0 6
表2 离子源控制条件
电离方式 ESI+
毛细管电压/kV 17.5
锥孔电压/V 45
射频透镜1电压/V 12.5
射频透镜2电压/V 12.5
表2(续)
锥孔反吹气流量/(L/h) 50
脱溶剂气温度/℃ 350
脱溶剂气流量/(L/h) 500
电子倍增电压/V 650
表3 质谱条件参数
化合物名称
母离子
(m/z)
定量子离子
碰撞能量
eV
定性子离子
(m/z)
碰撞能量
eV
离子化方式
AFTM1 329 273 23 259 23 ESI+
13C-AFTM1 346 317 23 288 24 ESI+
5.5 定性测定
试样中目标化合物色谱峰的保留时间与相应标准色谱峰的保留时间相比较,变化范围应在±2.5%
之内。
每种化合物的质谱定性离子必须出现,至少应包括一个母离子和两个子离子,而且同一检测批次,
对同一化合物,样品中目标化合物的两个子离子的相对丰度比与浓度相当的标准溶液相比,其允许偏差
不超过表4规定的范围。
表4 定性时相对离子丰度的最大允许偏差
相对离子丰度/% >50 20~50 10~20 ≤10
允许相对偏差/% ±20 ±25 ±30 ±50
在5.3、5.4液相色谱-串联质谱仪分析条件下,将标准系列溶液由低到高浓度进样检测,以AFTM1
和AFTM2色谱峰与内标色谱峰13C17-AFTM1的峰面积比值-浓度作图,得到标准曲线回归方程,其线
性相关系数应大于0.99。
5.7 试样溶液的测定
取5.2下处理得到的待测溶液进样,内标法计算待测液中目标物质的质量浓度,按第6章计算样品
中待测物的含量。
5.8 空白试验
不称取试样,按5.1和5.2的步骤做空白实验。应确认不含有干扰待测组分的物质。
6 分析结果的表述
X=ρ×
V×f×1000
m×1000
(1)
式中:
X ---试样中AFTM1或AFTM2的含量,单位为微克每千克(μg/kg);
ρ ---进样溶液中AFTM1或AFTM2按照内标法在标准曲线中对应的浓度,单位为纳克每毫
升(ng/mL);
V ---样品经免疫亲和柱净化洗脱后的最终定容体积,单位为毫升(mL);
1000---换算系数;
m ---试样的称样量,单位为克(g)。
计算结果保留三位有效数字。
7 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的20%。
8 其他
称取液态乳、酸奶4g时,本方法AFTM1检出限为0.005μg/kg,AFTM2检出限为0.005μg/kg,
AFTM1定量限为0.015μg/kg,AFTM2定量限为0.015μg/kg。
称取乳粉、特殊膳食用食品、奶油和奶酪1g时,本方法AFTM1检出限为0.02μg/kg,AFTM2检
第二法 高效液相色谱法
9 原理
试样中的黄曲霉毒素 M1和黄曲霉毒素 M2用甲醇-水溶液提取,上清液稀释后,经免疫亲和柱净化
和富集,净化液浓缩、定容和过滤后经液相色谱分离,荧光检测器检测。外标法定量。
10 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
10.1 试剂
10.1.1 乙腈(CH3CN):色谱纯。
10.1.2 甲醇(CH3OH):色谱纯。
10.1.4 磷酸氢二钠(Na2HPO4)。
10.1.5 磷酸二氢钾(KH2PO4)。
10.1.6 氯化钾(KCl)。
10.1.7 盐酸(HCl)。
10.1.8 石油醚(CnH2n+2):沸程为30℃~60℃。
10.2 试剂配制
10.2.1 乙腈-水溶液(25+75):量取250mL乙腈加入750mL水中,混匀。
10.2.2 乙腈-甲醇溶液(50+50):量取500mL乙腈加入500mL甲醇中,混匀。
10.2.3 磷酸盐缓冲溶液(以下简称PBS):称取8.00g氯化钠、1.20g磷酸氢二钠(或2.92g十二水磷
1000mL。
10.3 标准品
10.3.1 AFTM1标准品(C17H12O7,CAS:6795-23-9):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书
的标准物质。
10.3.2 AFTM2标准品(C17H14O7,CAS:6885-57-0):纯度≥98%,或经国家认证并授予标准物质证书
的标准物质。
10.4 标准溶液配制
10.4.1 标准储备溶液(10μg/mL):分别称取AFTM1和AFTM21mg(精确至0.01mg),分别用乙腈
溶解并定容至100mL。将溶液转移至棕色试剂瓶中,在-20℃下避光密封保存。临用前进行浓度校
10.4.2 混合标准储备溶液(1.0μg/mL):分别准确吸取10μg/mLAFT M1和 AFT M2标准储备液
1.00mL于同一10mL容量瓶中,加乙腈稀释至刻度,得到1.0μg/mL的混合标准液。此溶液密封后
避光4℃保存,有效期3个月。
10.4.3 100ng/mL混合标准工作液(AFTM1和AFTM2):准确移取混合标准储备溶液(1.0μg/mL)
1.0mL至10mL容量瓶中,加乙腈稀释至刻度。此溶液密封后避光4℃下保存,有效期3个月。
10.4.4 标准系列工作溶液:分别准确移取标准工作液5μL、10μL、50μL、100μL、200μL、500μL至
10mL容量瓶中,用初始流动相定容至刻度,AFTM1和AFTM2的浓度均为0.05ng/mL、0.1ng/mL、
0.5ng/mL、1.0ng/mL、2.0ng/mL、5.0ng/mL的系列标准溶液。
11 仪器和设备
11.2 水浴锅:温控50℃±2℃。
11.3 涡旋混合器。
11.4 超声波清洗器。
11.5 离心机:转速≥6000r/min。
11.6 旋转蒸发仪。
11.7 固相萃取装置(带真空泵)。
11.8 氮吹仪。
11.9 圆孔筛:1mm~2mm孔径。
11.10 液相色谱仪(带荧光检测器)。
11.12 一次性微孔滤头:带0.22μm微孔滤膜。
11.13 免疫亲和柱:柱容量≥100ng。(柱容量、回收率、柱回收率验证方法参见附录B)。
注:对于不同批次的亲和柱在使用前需进行质量验证。
12 分析步骤
使用不同厂商的免疫亲和柱,在样品的上样、淋洗和洗脱的操作方面可能略有不同,应该按照供应
商所提供的操作说明书要求进行操作。
警示:整个分析操作过程应在指定区域内进行。该区域应避光(直射阳光),具备相对独立的操作台
和废弃物存放装置。在整个实验过程中,操作者应按照接触剧毒物的要求采取相应的保护措施。
12.1 试液提取
12.2 净化
方法同5.2。
12.3 液相色谱参考条件
液相色谱参考条件列出如下:
a) 液相色谱柱:C18柱(柱长150mm,柱内径4.6mm;填料粒径5μm),或相当者。
b) 柱温:40℃。
c) 流动相:A相,水;B相,乙腈-甲醇(50+50)。等梯度洗脱条件:A,70%;B,30%。
d) 流速;1.0mL/min。
e) 荧光检测波长:发射波长360nm;激发波长430nm。
液相色谱图见附录D。
12.4 测定
12.4.1 标准曲线的制作
将系列标准溶液由低到高浓度依次进样检测,以峰面积-浓度作图,得到标准曲线回归方程。
12.4.2 试样溶液的测定
待测样液中的响应值应在标准曲线线性范围内,超过线性范围的则应稀释后重新进样分析。
12.4.3 空白试验
不称取试样,按12.1和12.2的步骤做空白实验。确认不含有干扰待测组分的物质。
13 分析结果的表述
X=ρ×
V×f×1000
m×1000
(2)
式中:
X ---试样中AFTM1或AFTM2的含量,单位为微克每千克(μg/kg);
ρ ---进样溶液中AFTM1或AFTM2的色谱峰由标准曲线所获得AFTM1或AFTM2的浓
度,单位为纳克每毫升(ng/mL);
V ---样品经免疫亲和柱净化洗脱后的最终定容体积,单位为毫升(mL);
1000---换算系数;
m ---试样的称样量,单位为克(g)。
计算结果保留三位有效数字。
14 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的20%。
15 其他
称取液态乳、酸奶4g时,本方法AFTM1检出限为0.005μg/kg,AFTM2检出限为0.0025μg/kg,
AFTM1定量限为0.015μg/kg,AFTM2定量限为0.0075μg/kg。
称取乳粉、特殊膳食用食品、奶油和奶酪1g时,本方法AFTM1检出限为0.02μg/kg,AFTM2检
第三法 酶联免疫吸附筛查法
16 原理
试样中的黄曲霉毒素 M1经均质、冷冻离心、脱脂或有机溶剂萃取等处理获得上清液。利用被辣根
过氧化物酶标记或固定在反应孔中的黄曲霉毒素 M1与样品或标准品中的黄曲霉毒素 M1竞争性结合
特异性抗体。在洗涤后加入相应显色剂显色,经无机酸终止反应,于450nm或630nm波长下检测。
样品中的黄曲霉毒素 M1与吸光度在一定浓度范围内呈反比。
17 试剂和溶剂
配制溶液所需试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的二级水。
按照试剂盒说明书所述,配制所需溶液。
18 仪器和设备
18.1 微孔板酶标仪:带450nm与630nm(可选)滤光片。
18.2 天平:最小感量0.01g。
18.3 离心机:转速≥6000r/min。
18.4 旋涡混合器。
19 分析步骤
19.1 样品前处理
19.1.1 液态样品
取约100g待测样品摇匀,将其中10g样品用离心机在6000r/min或更高转速下离心10min。
液)。
19.1.2 乳粉、特殊膳食用食品
称取10g待测样品(精确到0.1g)到小烧杯中,加水溶解,转移到100mL容量瓶中,用水定容至刻
度。以下步骤同19.1.1。
19.1.3 奶酪
称取50g待测样品(精确到0.1g),去除表面非食用部分,硬质奶酪可用粉碎机直接粉碎;软质奶
酪需先在-20℃冷冻过夜,然后立即用粉碎机进行粉碎。称取5g混合均匀的待测样品(精确到
0.1g),加入试剂盒所提供的提取液,按照试剂盒说明书进行提取,提取液即为待测液。
19.2 定量检测
20 分析结果的表述
20.1 酶联免疫试剂盒定量检测的标准工作曲线绘制
根据标准品浓度与吸光度变化关系绘制标准工作曲线。
20.2 待测液浓度计算
将待测液吸光度代入20.1所获得公式,计算得待测液浓度ρ。
20.3 结果计算
食品中黄曲霉毒素 M1的含量按式(3)计算:
X=ρ×
V×f
式中:
X ---食品中黄曲霉毒素 M1的含量,单位为微克每千克(μg/kg);
ρ ---待测液中黄曲霉毒素 M1的浓度,单位为微克每升(μg/L);
V ---定容体积(针对乳粉、特殊膳食用食品、液态样品)或者提取液体积(针对奶酪),单位为升(L);
f ---稀释倍数;
m ---样品取样量,单位为千克(kg)。
计算结果保留小数点后两位。
注:阳性样品需用第一法或第二法进一步确认。
21 精密度
22 其他
称取液态乳10g时,方法检出限为0.01μg/kg,定量限为0.03μg/kg。
称取乳粉和含乳特殊膳食用食品10g时,方法检出限为0.1μg/kg,定量限为0.3μg/kg。
称取奶酪5g时,方法检出限为0.02μg/kg,定量限为0.06μg/kg。
附 录 A
AFTM1、AFTM2的标准浓度校准方法
用乙腈溶液配制8μg/mL~10μg/mL的AFTM1、AFTM2的标准溶液。根据下面的方法,在最
大吸收波段处测定溶液的吸光度,确定AFTM1、AFTM2的实际浓度。
用分光光度计在340nm~370nm处测定,经扣除溶剂的空白试剂本底,校正比色皿系统误差后,
ρ=A×M ×
1000
(A.1)
式中:
ρ ---校准测定的AFTM1、AFTM2的实际浓度,单位为微克每毫升(μg/mL);
A---在λmax处测得的吸光度值;
M---AFTM1、AFTM2摩尔质量,单位为克每摩尔(g/mol);
ε ---AFTM1、AFTM2的吸光系数,单位为平方米每摩尔(m2/mol)。
表A.1 AFTM1的摩尔质量及摩尔吸光系数
AFTM1 328 乙腈 19000
AFTM2 330 乙腈 21400
附 录 B
免疫亲和柱的柱容量验证方法
B.1 柱容量验证
在30mL的PBS中加入300ngAFTM1标准储备溶液,充分混匀。分别取同一批次3根免疫亲和
柱,每根柱的上样量为10mL。经上样、淋洗、洗脱,收集洗脱液,用氮气吹干至1mL,用初始流动相定
容至10mL,用液相色谱仪分离测定AFTM1的含量。
结果判定:结果AFTM1≥80ng,为可使用商品。

GB 5009.24-2016
National Food Safety Standard -- Determination of M Aflatoxins in Foods
GB
NATIONAL STANDARD OF THE
PEOPLE’S REPUBLIC OF CHINA
National Food Safety Standard -
Determination of M Aflatoxins in Foods
食品安全国家标准
食品中黄曲霉毒素M族的测定
Issued on. December 23, 2016 Implemented on. June 23, 2017
Issued by. National Health and Family Planning Commission of the PRC;
China Food and Drug Administration.
Table of Contents
Foreword ...4 
1 Scope ...5 
Method I -- Isotope Dilution Liquid Chromatography - Tandem Mass
Spectrometry ...5 
2 Principle ...5 
3 Reagents and Materials ...5 
4 Instruments and Apparatuses ...7 
5 Analytical Procedure ...8 
6 Expression of Analytical Result ...13 
7 Precision ...13 
8 Others ...13 
Method II -- High-performance Liquid Chromatography ...14 
9 Principle ...14 
10 Reagents and Materials ...14 
11 Instruments and Apparatuses ...15 
12 Analytical Procedure ...16 
13 Expression of Analytical Result ...17 
14 Precision ...18 
15 Others ...18 
Method III -- Enzyme-linked Immunosorbent Assay ...18 
16 Principle ...18 
17 Reagents and Materials ...19 
18 Instruments and Apparatuses ...19 
19 Analytical Procedure ...19 
20 Expression of Analytical Result ...20 
21 Precision ...21 
22 Others ...21 
Appendix A Standard Concentration Calibration Method for AFT M1 and AFT M2
...22 
Appendix B Column Capacity Verification Method for Immunoaffinity Column
...23 
Appendix C Liquid Chromatography - Mass Spectrogram and Sub-ion Scan 24 
Appendix D Liquid Chromatogram ...27 
Appendix E Mass Determination Method of Enzyme-linked Immunosorbent
Assay Kit ...28 
National Food Safety Standard -
Determination of M Aflatoxins in Foods
1 Scope
This Standard specifies the methods for the determination of aflatoxins M1 and
aflatoxins M2 (hereinafter referred to as AFT M1 and AFT M2) in foods.
Method I is isotope dilution liquid chromatography - tandem mass spectrometry, which
is applicable to the determination of AFT M1 and AFT M2 in milk, milk products and milk-
containing special dietary food.
Method II is high-performance liquid chromatography; its scope of application is the
same as Method I.
Method III is enzyme-linked immunosorbent screening assay, which is applicable to
the screening determination of AFT M1 in milk, milk products and milk-containing
special dietary food.
Method I -- Isotope Dilution Liquid Chromatography -
Tandem Mass Spectrometry
2 Principle
Use methanol - water solution to extract aflatoxins M1 and aflatoxins M2 in sample.Use
water or phosphate buffer solution to dilute the supernatant, then, purify and enrich it
through immunoaffinity column.After concentration, constant-volume and filtering of
the purified liquid, separate it through liquid chromatography.Detect it through tandem
mass spectrometry, then, quantify it through isotope internal standard method.
3 Reagents and Materials
pure; water shall be Grade-1 water stipulated in GB/T 6682.
3.1 Reagents
3.1.1 Acetonitrile (CH3CN). chromatographic purity.
calibrate the concentration (please refer to Appendix A for the calibration method).
3.4.2 Mixed standard stock solution (1.0 μg/mL). respectively and accurately absorb
1.00 mL of 10 μg/mL AFT M1 and AFT M2 standard stock solution, then, place them in
the same 10 mL volumetric flask.Add acetonitrile to dilute to the constant volume, then,
obtain 1.0 μg/mL mixed standard solution.This solution can be preserved in an airtight
container in the dark at 4 °C; it shall remain valid for 3 months.
standard stock solution (1.0 μg/mL), then, place it in a 10 mL volumetric flask.Use
acetonitrile to dilute to the constant volume.This solution can be preserved in an
airtight container in the dark at 4 °C; it shall remain valid for 3 months.
3.4.4 50 ng/mL isotope internal standard working solution 1(13C17-AFT M1). take 1 mL
of AFT M1 isotope internal standard (0.5 μg/mL), then, use acetonitrile to dilute to 10
mL.Preserve it at -20 °C; it shall be used for the determination of liquid sample.It shall
remain valid for 3 months.
3.4.5 5 ng/mL isotope internal standard working solution 2(13C17-AFT M1). take 100 μL
of AFT M1 isotope internal standard (0.5 μg/mL), then, use acetonitrile to dilute to 10
remain valid for 3 months.
3.4.6 Standard series of working solution. respectively and accurately absorb 5 μL, 10
μL, 50 μL, 100 μL, 200 μL and 500 μL of standard working solution, then, place them
in 10 mL volumetric flask.Add 100 μL of 50 ng/mL isotope internal standard working
solution.Use initial mobile phase to dilute to the constant volume.Thus, prepare AFT
M1 and AFT M2 series of standard solution at the concentration of 0.05 ng/mL, 0.1
ng/mL, 0.5 ng/mL, 1.0 ng/mL, 2.0 ng/mL and 5.0 ng/mL.
4 Instruments and Apparatuses
4.1 Balance. division value. 0.01 g, 0.001 g and 0.00001 g.
4.3 Vortex mixer.
4.4 Ultrasonic cleaner.
4.5 Centrifuge. ≥ 6,000 r/min.
4.6 Rotary evaporator.
4.7 Solid phase extraction device (equipped with vacuum pump).
4.8 Nitrogen blowing instrument.
vortex mixing.If milk powder cannot completely dissolve, place the centrifuge tube in
50 °C water bath; after the milk powder completely dissolves, take it out.Wait till the
sample solution cools down to 20 °C, then, add 10 mL of methanol; start vortex for 3
glass fiber filter paper.Transfer an appropriate amount of the supernatant or filtrate to
a beaker, then, add 40 mL of water or PBS to dilute it; reserve it for later use.
5.1.3 Cream
Weigh-take 1 g (accurate to 0.001 g) of sample, then, place it in a 50 mL centrifuge
tube.Add 100 μL of 13C17-AFT M1 internal standard solution (5 ng/mL); start oscillation
blending, then, evenly place it for 30 min.Add 8 mL of petroleum ether; wait till cream
dissolves, then, add 9 mL of water and 11 mL of methanol.Start oscillation for 30 min.
Transfer all the liquid to separating funnel.Add 0.3 g of sodium chloride, then,
thoroughly shake and dissolve it.Evenly place it and wait for layering, then, transfer
mL, then, use PBS to dilute it to 30 mL.
5.1.4 Cheese
Weigh-take 1 g (accurate to 0.001 g) of already shredded and evenly mixed sample
(through aperture 1 mm ~ 2 mm round sieve), then, place it in a 50 mL centrifuge tube.
Add 100 μL of 13C17-AFT M1 internal standard solution (5 ng/mL); start oscillation
blending, then, evenly place it for 30 min.Add 1 mL of water and 18 mL of methanol.
Start oscillation for 30 min.Place it at 4 °C; start centrifugation at 6,000 r/min for 10
min, or, filter it through glass fiber filter paper.Transfer an appropriate amount of the
supernatant or filtrate to a round-bottomed flask.Start rotary evaporation, till it is below
5.2 Purification
5.2.1 Preparation of immunoaffinity column
Restore immunoaffinity column, which is preserved at low temperature, to room
temperature.
5.2.2 Purification
After abandoning the liquid in the immunoaffinity column, transfer the above-mentioned
sample solution to a 50 mL syringe; adjust the flow rate of dropping to 1 mL/min ~ 3
mL/min.Wait till the dropping of the sample solution finishes, add 10 mL of water to
the syringe.At a stable flow rate, rinse the immunoaffinity column.Wait till water
from the vacuum system; underneath the affinity column, place a 10 mL scale test tube;
take down the 50 mL syringe.Add 2 x 2 mL of acetonitrile (or methanol) to elute the
affinity column.Control the flow rate of dropping at 1 mL/min ~ 3 mL/min.Use the
vacuum pump to drain the affinity column, then, gather all the eluent to the scale test
When weighing-taking 1 g of milk powder, special dietary food, cream and cheese, this
Method’s detection limit of AFT M1 is 0.02 μg/kg; the detection limit of AFT M2 is 0.02
μg/kg; the quantitation limit of AFT M1 is 0.05 μg/kg; the quantitation limit of AFT M2 is
0.05 μg/kg.
Method II -- High-performance Liquid Chromatography
Use methanol - water solution to extract aflatoxins M1 and aflatoxins M2 in sample.
After diluting the supernatant, purify and enrich through the immunoaffinity column.
After concentration, constant-volume and filtering of the purified liquid, separate it
through liquid chromatography.Detect it through fluorescence detector, then, quantify
it through external standard method.
10 Reagents and Materials
Unless it is otherwise stipulated, all reagents adopted in this Method shall be analytical
pure; water shall be Grade-1 water stipulated in GB/T 6682.
10.1 Reagents
10.1.2 Methanol (CH3OH). chromatographic purity.
10.1.3 Sodium chloride (NaCl).
10.1.4 Disodium phosphate (Na2HPO4).
10.1.5 Potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4).
10.1.6 Potassium chloride (KCl).
10.1.7 Hydrochloric acid (HCl).
10.1.8 Petroleum ether (CnH2n+2). boiling range. 30 °C ~ 60 °C.
10.2 Reagent Preparation
10.2.1 Acetonitrile - water solution (25 + 75). measure-take 250 mL of acetonitrile; add
10.2.2 Acetonitrile - methanol solution (50 + 50). measure-take 500 mL of acetonitrile;
11.3 Vortex mixer.
11.4 Ultrasonic cleaner.
11.5 Centrifuge. rotating speed ≥ 6,000 r/min.
11.6 Rotary evaporator.
11.7 Solid phase extraction device (equipped with vacuum pump).
11.8 Nitrogen blowing instrument.
11.9 Round sieve. 1 mm ~ 2 mm aperture.
11.10 Liquid chromatography (equipped with fluorescence detector).
11.12 Disposable microporous filter head. equipped with 0.22 μm microporous filter
membrane.
11.13 Immunoaffinity column. column capacity ≥ 100 ng (please refer to Appendix B
for the method of testing and verifying column capacity, recovery rate and column
recovery rate).
NOTE. before use, the mass of different batches of affinity column needs to be verified.
12 Analytical Procedure
The application of immunoaffinity columns provided by different manufacturers might
be slightly different in sample operation, such as sample loading, leaching and elution.
provided by the manufacturers.
Warning. the whole analysis and operation process shall be conducted in an
appointed area.This area shall be kept away from light (direct sunlight);
be equipped with relatively independent operating bench and waste
storage device.During the whole experiment process, operators shall
adopt corresponding protective measures in accordance with the
requirements of exposure to violent toxicity.
12.1 Sample Extraction
Do not add isotope internal standard solution.Other than this, the method is the same
   
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