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GB 5009.27-2016

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GB 5009.27-2016 英文版 250 购买 现货,9秒内自动发货PDF,有增值税发票。 食品安全国家标准 食品中苯并(a)芘的测定 有效

   
标准详细信息 GB 5009.27-2016; GB5009.27-2016
中文名称: 食品安全国家标准 食品中苯并(a)芘的测定
英文名称: Determination of benzo (a) pyrene in foods
行业: 国家标准
发布日期: 2016-12-23
实施日期: 2017-06-23
旧标准 (被替代): GB/T 22509-2008; GB/T 5009.27-2003; NY/T 1666-2008; SC/T 3041-2008
标准依据: National Health and Family Planning Commission Notice No.17 of 2016

GB 5009.27-2016
Determination of benzo (a) pyrene in foods
中华人民共和国国家标准
食品安全国家标准
食品中苯并(a)芘的测定
2016-12-23发布
2017-06-23实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会
国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局 发 布
前言
本标准代替GB/T 5009.27-2003《食品中苯并(a)芘的测定》、GB/T 22509-2008《动植物油脂
苯并(a)芘的测定 反相高效液相色谱法》、SC/T 3041-2008《水产品中苯并(a)芘的测定 高效液相
色谱法》和NY/T 1666-2008《肉制品中苯并(a)芘的测定 高效液相色谱法》。
本标准与GB/T 5009.27-2003、GB/T 22509-2008、SC/T 3041-2008和 NY/T 1666-2008相
比,主要变化如下:
---标准名称修改为“食品安全国家标准食品中苯并(a)芘的测定”;
---修改了方法的适用范围;
---修改了样品前处理方法;
---删除了荧光分光光度法与目测比色法。
食品安全国家标准
食品中苯并(a)芘的测定
1 范围
本标准规定了食品中苯并(a)芘的测定方法。
本标准适用于谷物及其制品(稻谷、糙米、大米、小麦、小麦粉、玉米、玉米面、玉米渣、玉米片)、肉及
肉制品(熏、烧、烤肉类)、水产动物及其制品(熏、烤水产品)、油脂及其制品中苯并(a)芘的测定。
2 原理
试样经过有机溶剂提取,中性氧化铝或分子印迹小柱净化,浓缩至干,乙腈溶解,反相液相色谱分
离,荧光检测器检测,根据色谱峰的保留时间定性,外标法定量。
3 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 试剂
3.1.1 甲苯(C7H8):色谱纯。
3.1.2 乙腈(CH3CN):色谱纯。
3.1.3 正己烷(C6H14):色谱纯。
3.1.4 二氯甲烷(CH2Cl2):色谱纯。
3.2 标准品
苯并(a)芘标准品(C20H12,CAS号:50-32-8):纯度≥99.0%,或经国家认证并授予标准物质证书的
标准物质。
警告---苯并(a)芘是一种已知的致癌物质,测定时应特别注意安全防护 测定应在通风柜中进行
并戴手套,尽量减少暴露。如已污染了皮肤,应采用10%次氯酸钠水溶液浸泡和洗刷,在紫外光下观察
皮肤上有无蓝紫色斑点,一直洗到蓝色斑点消失为止。
3.3 标准溶液配制
3.3.1 苯并(a)芘标准储备液(100μg/mL):准确称取苯并(a)芘1mg(精确到0.01mg)于10mL容量
瓶中,用甲苯溶解,定容。避光保存在0℃~5℃的冰箱中,保存期1年。
3.3.2 苯并(a)芘标准中间液(1.0μg/mL):吸取0.10mL苯并(a)芘标准储备液(100μg/mL),用乙腈定容
到10mL。避光保存在0℃~5℃的冰箱中,保存期1个月。
3.3.3 苯并(a)芘标准工作液:把苯并(a)芘标准中间液(1.0μg/mL)用乙腈稀释得到0.5ng/mL、1.0ng/
mL、5.0ng/mL、10.0ng/mL、20.0ng/mL的校准曲线溶液,临用现配。
3.4 材料
3.4.1 中性氧化铝柱:填料粒径75μm~150μm,22g,60mL。
注:空气中水分对其性能影响很大,打开柱子包装后应立即使用或密闭避光保存。由于不同品牌氧化铝活性存在
差异,建议对质控样品进行测试,或做加标回收试验,以验证氧化铝活性是否满足回收率要求。
3.4.2 苯并(a)芘分子印迹柱:500mg,6mL。
注:由于不同品牌分子印迹柱质量存在差异,建议对质控样品进行测试,或做加标回收试验,以验证是否满足要求。
3.4.3 微孔滤膜:0.45μm。
4 仪器和设备
4.1 液相色谱仪:配有荧光检测器。
4.2 分析天平:感量为0.01mg和1mg。
4.3 粉碎机。
4.4 组织匀浆机。
4.5 离心机:转速≥4000r/min。
4.6 涡旋振荡器。
4.7 超声波振荡器。
4.8 旋转蒸发器或氮气吹干装置。
4.9 固相萃取装置。
5 分析步骤
5.1 试样制备、提取及净化
5.1.1 谷物及其制品
预处理:去除杂质,磨碎成均匀的样品,储于洁净的样品瓶中,并标明标记,于室温下或按产品包装
要求的保存条件保存备用。
提取:称取1g(精确到0.001g)试样,加入5mL正己烷,旋涡混合0.5min,40℃下超声提取
10min,4000r/min离心5min,转移出上清液。再加入5mL正己烷重复提取一次。合并上清液,用
下列2种净化方法之一进行净化。
净化方法1:采用中性氧化铝柱,用30mL正己烷活化柱子,待液面降至柱床时,关闭底部旋塞。将
待净化液转移进柱子,打开旋塞,以1mL/min的速度收集净化液到茄形瓶,再转入50mL正己烷洗
脱,继续收集净化液。将净化液在40℃下旋转蒸至约1mL,转移至色谱仪进样小瓶,在40℃氮气流下
浓缩至近干。用1mL正己烷清洗茄形瓶,将洗涤液再次转移至色谱仪进样小瓶并浓缩至干。准确吸
取1mL乙腈到色谱仪进样小瓶,涡旋复溶0.5min,过微孔滤膜后供液相色谱测定。
净化方法2:采用苯并(a)芘分子印迹柱,依次用5mL二氯甲烷及5mL正己烷活化柱子。将待净
化液转移进柱子,待液面降至柱床时,用6mL正己烷淋洗柱子,弃去流出液。用6mL二氯甲烷洗脱并
膜后供液相色谱测定。
5.1.2 熏、烧、烤肉类及熏、烤水产品
预处理:肉去骨、鱼去刺、贝去壳,把可食部分绞碎均匀,储于洁净的样品瓶中,并标明标记,于
-16℃~-18℃冰箱中保存备用。
提取:同5.1.1中提取部分。
净化方法1:除了正己烷洗脱液体积为70mL外,其余操作同5.1.1中净化方法1。
净化方法2:操作同5.1.1中净化方法2。
5.1.3 油脂及其制品
提取:称取0.4g(精确到0.001g)试样,加入5mL正己烷,旋涡混合0.5min,待净化。
净化方法1:除了最后用0.4mL乙腈涡旋复溶试样外,其余操作同5.1.1中的净化方法1。
净化方法2:除了最后用0.4mL乙腈涡旋复溶试样外,其余操作同5.1.1中的净化方法2。
试样制备时,不同试样的前处理需要同时做试样空白试验。
5.2 仪器参考条件
a) 色谱柱:C18,柱长250mm,内径4.6mm,粒径5μm,或性能相当者;
b) 流动相:乙腈+水=88+12;
c) 流速:1.0mL/min;
d) 荧光检测器:激发波长384nm,发射波长406nm;
e) 柱温:35℃;
5.3 标准曲线的制作
将标准系列工作液分别注入液相色谱中,测定相应的色谱峰,以标准系列工作液的浓度为横坐标,
以峰面积为纵坐标,得到标准曲线回归方程。苯并(a)芘标准溶液的液相色谱图见图A.1。
5.4 试样溶液的测定
将待测液进样测定,得到苯并(a)芘色谱峰面积。根据标准曲线回归方程计算试样溶液中苯并(a)
芘的浓度。
6 分析结果的表述
试样中苯并(a)芘的含量按式(1)计算:
X=ρ×
(1)
式中:
X ---试样中苯并(a)芘含量,单位为微克每千克(μg/kg);
ρ ---由标准曲线得到的样品净化溶液浓度,单位为纳克每毫升(ng/mL);
V ---试样最终定容体积,单位为毫升(mL);
m ---试样质量,单位为克(g);
1000---由ng/g换算成μg/kg的换算因子。
结果保留到小数点后一位。
7 精密度
8 其他
方法检出限为0.2μg/kg,定量限为0.5μg/kg。
附 录 A
苯并(a)芘标准溶液的液相色谱图
苯并(a)芘标准溶液的液相色谱图见图A.1。
图A.1 苯并(a)芘标准溶液的液相色谱图


GB 5009.27-2016
GB
NATIONAL STANDARD OF THE
PEOPLE’S REPUBLIC OF CHINA
National Food Safety Standard –
Determination of Benzo(a)Pyrene in Foods
ISSUED ON. DECEMBER 23, 2016
IMPLEMENTED ON. JUNE 23, 2017
Issued by. National Health and Family Planning Commission of the
People's Republic of China;
China Food and Drug Administration.
Table of Contents
Foreword ... 3 
1 Scope ... 4 
2 Principle ... 4 
3 Reagents and Materials ... 4 
4 Instruments and Apparatus ... 6 
5 Analysis Steps ... 6 
6 Expression of Analysis Results ... 8 
7 Precision ... 9 
8 Others ... 9 
Appendix A Liquid Chromatogram of Benzo(a)pyrene Standard Solution ... 10 
National Food Safety Standard –
Determination of Benzo(a)Pyrene in Foods
1 Scope
This Standard specifies the determination method for the benzo(a)pyrene in foods.
This Standard is applicable to determination of the benzo(a)pyrene of the grains and
their products (rice, brown rice, rice, wheat, wheat flour, corn, cornmeal, corn residues
AND corn flakes), meat and meat products (smoked, roasted and barbecued), aquatic
animals and their products (smoked and boiled aquatic products) AND grease & their
products.
2 Principle
Samples shall be extracted by organic solvents, purified by neutral alumina or
molecularly imprinted cartridges AND concentrated to dryness; use acetonitrile to
dissolve it; it shall be separated by reversed-phase liquid chromatography AND
detected by fluorescence detector. Use the retention time of chromatographic peaks
to determine the quality; use the external standard method to determine the quantity.
3 Reagents and Materials
Unless otherwise stated, the used reagents in this method shall all be analytical purity;
the water shall be the Grade-1 water which is specified in GB/T 6682.
3.1 Reagents
3.1.1 Toluene (C7H8). Chromatographically pure.
3.1.2 Acetonitrile (CH3CN). Chromatographically pure.
3.1.3 n-hexane (C6H14). chromatography.
3.1.4 Dichloromethane (CH2Cl2). Chromatographically pure.
3.2 Standards
Benzo(a)pyrene standard (C20H12, CAS No.. 50-32-8). the purity shall be ≥ 99.0%; or
solution into the chromatograph’s sample vial again; concentrate it until it is near dry.
Accurately pipette 1mL of acetonitrile into the chromatograph’s sample vial, vortex re-
dissolve it for 0.5min; after passing the microporous membrane, it shall be used for
liquid chromatography.
Purification method 2. adopt the benzo(a)pyrene molecular imprinting column; orderly
use 5mL of dichloromethane and 5mL of n-hexane to activate the column. Transfer the
liquid to be purified into the column; when the liquid-level falls to the column bed, use
6mL of n-hexane to rinse the column; discard the effluent. Use 6mL of dichloromethane
to elute and collect the purified solution into the test tube. Under 40°C, use nitrogen to
dry the purification solution; accurately pipette 1mL of acetonitrile; vortex re-dissolve it
for 0.5min; after passing the microporous membrane, it shall be used for liquid
chromatography.
5.1.2 Smoked, roasted & barbecued AND smoked & grilled aquatic products
Pretreatment. remove the bones of the meat; remove the thorns of fish; remove the
shell of shellfish; grind the edible portion evenly; store it in clean sample bottles; mark
it; at -16°C ~ -18°C, stored it in the refrigerator.
Extraction. same as the extraction in 5.1.1.
Purification method 1. Except that the volume of n-hexane’s eluent is 70 mL, the rest
of the operation shall be the same as the purification method 1 in 5.1.1.
Purification method 2. the operation shall be the same as the purification method 2 in
5.1.1.
5.1.3 Grease and its products
Extraction. weigh and take 0.4g (accurate to 0.001g) of sample; add 5mL of n-hexane;
Note. If the samples are the hydrous oil products, such as margarine, etc., emulsification will occur. It
shall perform 4000r/min centrifugalization for 5min; transfer out the n-hexane layer. To be purified.
Purification method 1. Except for using 0.4mL of acetonitrile to vertically re-dissolve
the sample in the last, other operations shall be the same as the purification method 1
in 5.1.1.
Purification method 2. Except for using 0.4mL of acetonitrile to vertically re-dissolve
the sample in the last, other operations shall be the same as the purification method 2
in 5.1.1. When the sample is prepared, pretreatments of different samples need to
have sample’s blank test at the same time.
   
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