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GB 5009.33-2016

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GB 5009.33-2016 英文版 500 购买 现货,9秒内自动发货PDF,有增值税发票。 食品安全国家标准 食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定 有效

   
标准详细信息 GB 5009.33-2016; GB5009.33-2016
中文名称: 食品安全国家标准 食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定
英文名称: National food safety standard Determination of nitrite and nitrate in foods
行业: 国家标准
中标分类: X09
发布日期: 2016-12-23
实施日期: 2017-06-23
旧标准 (被替代): GB 5009.33-2010; NY/T 1279-2007; NY/T 1375-2007; SN/T 3151-2012
标准依据: National Health and Family Planning Commission Notice No.17 of 2016

GB 5009.33-2016
National food safety standard -- Determination of nitrite and nitrate in foods
中华人民共和国国家标准
食品安全国家标准
食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定
2016-12-23发布
2017-06-23实施
中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会
国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局 发 布
前言
本标准代替 GB 5009.33-2010《食品安全国家标准 食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定》、
NY/T 1375-2007《植物产品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定 离子色谱法》、NY/T 1279-2007《蔬菜、水
果中硝酸盐的测定 紫外分光光度法》、SN/T 3151-2012《出口食品中亚硝酸盐和硝酸盐的测定 离
子色谱法》。
本标准与GB 5009.33-2010相比,主要变化如下:
---合并原第二法、第三法为第二法;
---增加了蔬菜、水果中硝酸盐的测定的紫外分光光度法。
食品安全国家标准
食品中亚硝酸盐与硝酸盐的测定
1 范围
本标准规定了食品中亚硝酸盐和硝酸盐的测定方法。
本标准适用于食品中亚硝酸盐和硝酸盐的测定。
第一法 离子色谱法
2 原理
试样经沉淀蛋白质、除去脂肪后,采用相应的方法提取和净化,以氢氧化钾溶液为淋洗液,阴离子交
换柱分离,电导检测器或紫外检测器检测。以保留时间定性,外标法定量。
3 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 试剂
3.1.1 乙酸(CH3COOH)。
3.1.2 氢氧化钾(KOH)。
3.2 试剂配制
3.2.1 乙酸溶液(3%):量取乙酸3mL于100mL容量瓶中,以水稀释至刻度,混匀。
3.2.2 氢氧化钾溶液(1mol/L):称取6g氢氧化钾,加入新煮沸过的冷水溶解,并稀释至100mL,
混匀。
3.3 标准品
3.3.1 亚硝酸钠(NaNO2,CAS号:7632-00-0):基准试剂,或采用具有标准物质证书的亚硝酸盐标准
溶液。
3.3.2 硝酸钠(NaNO3,CAS号:7631-99-4):基准试剂,或采用具有标准物质证书的硝酸盐标准溶液。
3.4 标准溶液的制备
3.4.1 亚硝酸盐标准储备液(100mg/L,以NO2-计,下同):准确称取0.1500g于110℃~120℃干燥
至恒重的亚硝酸钠,用水溶解并转移至1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。
3.4.2 硝酸盐标准储备液(1000mg/L,以 NO3-计,下同):准确称取1.3710g于110℃~120℃干燥
至恒重的硝酸钠,用水溶解并转移至1000mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。
3.4.3 亚硝酸盐和硝酸盐混合标准中间液:准确移取亚硝酸根离子(NO2-)和硝酸根离子(NO3-)的标
准储备液各1.0mL于100mL容量瓶中,用水稀释至刻度,此溶液每升含亚硝酸根离子1.0mg和硝酸
根离子10.0mg。
3.4.4 亚硝酸盐和硝酸盐混合标准使用液:移取亚硝酸盐和硝酸盐混合标准中间液,加水逐级稀释,制
成系列混合标准使用液,亚硝酸根离子浓度分别为0.02mg/L、0.04mg/L、0.06mg/L、0.08mg/L、
0.10mg/L、0.15mg/L、0.20mg/L;硝酸根离子浓度分别为0.2mg/L、0.4mg/L、0.6mg/L、0.8mg/L、
1.0mg/L、1.5mg/L、2.0mg/L。
4 仪器和设备
4.1 离子色谱仪:配电导检测器及抑制器或紫外检测器,高容量阴离子交换柱,50μL定量环。
4.2 食物粉碎机。
4.3 超声波清洗器。
4.4 分析天平:感量为0.1mg和1mg。
4.5 离心机:转速≥10000r/min,配50mL离心管。
4.6 0.22μm 水性滤膜针头滤器。
4.7 净化柱:包括C18柱、Ag柱和Na柱或等效柱。
4.8 注射器:1.0mL和2.5mL。
注:所有玻璃器皿使用前均需依次用2mol/L氢氧化钾和水分别浸泡4h,然后用水冲洗3次~5次,晾干备用。
5 分析步骤
5.1 试样预处理
5.1.1 蔬菜、水果:将新鲜蔬菜、水果试样用自来水洗净后,用水冲洗,晾干后,取可食部切碎混匀。将
切碎的样品用四分法取适量,用食物粉碎机制成匀浆,备用。如需加水应记录加水量。
5.1.2 粮食及其他植物样品:除去可见杂质后,取有代表性试样50g~100g,粉碎后,过0.30mm孔
筛,混匀,备用。
5.1.3 肉类、蛋、水产及其制品:用四分法取适量或取全部,用食物粉碎机制成匀浆,备用。
5.1.4 乳粉、豆奶粉、婴儿配方粉等固态乳制品(不包括干酪):将试样装入能够容纳2倍试样体积的带
盖容器中,通过反复摇晃和颠倒容器使样品充分混匀直到使试样均一化。
5.1.5 发酵乳、乳、炼乳及其他液体乳制品:通过搅拌或反复摇晃和颠倒容器使试样充分混匀。
5.1.6 干酪:取适量的样品研磨成均匀的泥浆状。为避免水分损失,研磨过程中应避免产生过多的
热量。
5.2 提取
5.2.1 蔬菜、水果等植物性试样:称取试样5g(精确至0.001g,可适当调整试样的取样量,以下相同),
置于150mL具塞锥形瓶中,加入80mL水,1mL1mol/L氢氧化钾溶液,超声提取30min,每隔5min
振摇1次,保持固相完全分散。于75℃水浴中放置5min,取出放置至室温,定量转移至100mL容量
瓶中,加水稀释至刻度,混匀。溶液经滤纸过滤后,取部分溶液于10000r/min离心15min,上清液
备用。
5.2.2 肉类、蛋类、鱼类、及其制品等:称取试样匀浆5g(精确至0.001g),置于150mL具塞锥形瓶中,
5min,取出放置至室温,定量转移至100mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。溶液经滤纸过滤后,取
部分溶液于10000r/min离心15min,上清液备用。
5.2.3 腌鱼类、腌肉类及其他腌制品:称取试样匀浆2g(精确至0.001g),置于150mL具塞锥形瓶中,
加入80mL水,超声提取30min,每隔5min振摇1次,保持固相完全分散。于75℃水浴中放置
5min,取出放置至室温,定量转移至100mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。溶液经滤纸过滤后,取
部分溶液于10000r/min离心15min,上清液备用。
5.2.4 乳:称取试样10g(精确至0.01g),置于100mL具塞锥形瓶中,加水80mL,摇匀,超声30min,
加入3%乙酸溶液2mL,于4℃放置20min,取出放置至室温,加水稀释至刻度。溶液经滤纸过滤,滤
液备用。
声30min,取出放置至室温,定量转移至100mL容量瓶中,加入3%乙酸溶液2mL,加水稀释至刻度,
混匀。于4℃放置20min,取出放置至室温,溶液经滤纸过滤,滤液备用。
5.2.6 取上述备用溶液约15mL,通过0.22μm水性滤膜针头滤器、C18柱,弃去前面3mL(如果氯离子
大于100mg/L,则需要依次通过针头滤器、C18柱、Ag柱和 Na柱,弃去前面7mL),收集后面洗脱液
待测。
固相萃取柱使用前需进行活化,C18柱(1.0mL)、Ag柱(1.0mL)和Na柱(1.0mL),其活化过程为:
C18柱(1.0mL)使用前依次用10mL甲醇、15mL水通过,静置活化30min。Ag柱(1.0mL)和Na柱
(1.0mL)用10mL水通过,静置活化30min。
5.3 仪器参考条件
功能团的高容量阴离子交换柱,4mm×250mm(带保护柱4mm×50mm),或性能相当的离子色
谱柱。
5.3.2 淋洗液
5.3.2.1 氢氧化钾溶液,浓度为6mmol/L~70mmol/L;洗脱梯度为6mmol/L30min,70mmol/L
5min,6mmol/L5min;流速1.0mL/min。
5.3.2.2 粉状婴幼儿配方食品:氢氧化钾溶液,浓度为5mmol/L~50mmol/L;洗脱梯度为5mmol/L
33min,50mmol/L5min,5mmol/L5min;流速1.3mL/min。
5.3.3 抑制器。
5.3.4 检测器:电导检测器,检测池温度为35℃;或紫外检测器,检测波长为226nm。
5.4 测定
5.4.1 标准曲线的制作
将标准系列工作液分别注入离子色谱仪中,得到各浓度标准工作液色谱图,测定相应的峰高(μS)
或峰面积,以标准工作液的浓度为横坐标,以峰高(μS)或峰面积为纵坐标,绘制标准曲线(亚硝酸盐和
硝酸盐标准色谱图见图A.1)。
5.4.2 试样溶液的测定
将空白和试样溶液注入离子色谱仪中,得到空白和试样溶液的峰高(μS)或峰面积,根据标准曲线
得到待测液中亚硝酸根离子或硝酸根离子的浓度。
6 分析结果的表述
X=
(ρ-ρ0)×V×f×1000
m×1000
(1)
式中:
X ---试样中亚硝酸根离子或硝酸根离子的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
ρ ---测定用试样溶液中的亚硝酸根离子或硝酸根离子浓度,单位为毫克每升(mg/L);
ρ0 ---试剂空白液中亚硝酸根离子或硝酸根离子的浓度,单位为毫克每升(mg/L);
V ---试样溶液体积,单位为毫升(mL);
1000---换算系数;
m ---试样取样量,单位为克(g)。
试样中测得的亚硝酸根离子含量乘以换算系数1.5,即得亚硝酸盐(按亚硝酸钠计)含量;试样中测
得的硝酸根离子含量乘以换算系数1.37,即得硝酸盐(按硝酸钠计)含量。
结果保留2位有效数字。
7 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。
8 其他
第一法中亚硝酸盐和硝酸盐检出限分别为0.2mg/kg和0.4mg/kg。
9 原理
亚硝酸盐采用盐酸萘乙二胺法测定,硝酸盐采用镉柱还原法测定。
试样经沉淀蛋白质、除去脂肪后,在弱酸条件下,亚硝酸盐与对氨基苯磺酸重氮化后,再与盐酸萘乙
二胺偶合形成紫红色染料,外标法测得亚硝酸盐含量。采用镉柱将硝酸盐还原成亚硝酸盐,测得亚硝酸
盐总量,由测得的亚硝酸盐总量减去试样中亚硝酸盐含量,即得试样中硝酸盐含量。
10 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
10.1 试剂
10.1.1 亚铁氰化钾[K4Fe(CN)6·3H2O]。
10.1.3 冰乙酸(CH3COOH)。
10.1.4 硼酸钠(Na2B4O7·10H2O)。
10.1.5 盐酸(HCl,ρ=1.19g/mL)。
10.1.6 氨水(NH3·H2O,25%)。
10.1.7 对氨基苯磺酸(C6H7NO3S)。
10.1.8 盐酸萘乙二胺(C12H14N2·2HCl)。
10.1.9 锌皮或锌棒。
10.1.10 硫酸镉(CdSO4·8H2O)。
10.1.11 硫酸铜(CuSO4·5H2O)。
10.2.1 亚铁氰化钾溶液(106g/L):称取106.0g亚铁氰化钾,用水溶解,并稀释至1000mL。
10.2.2 乙酸锌溶液(220g/L):称取220.0g乙酸锌,先加30mL冰乙酸溶解,用水稀释至1000mL。
10.2.3 饱和硼砂溶液(50g/L):称取5.0g硼酸钠,溶于100mL热水中,冷却后备用。
10.2.4 氨缓冲溶液(pH9.6~9.7):量取30mL盐酸,加100mL水,混匀后加65mL氨水,再加水稀释
至1000mL,混匀。调节pH 至9.6~9.7。
10.2.5 氨缓冲液的稀释液:量取50mLpH9.6~9.7氨缓冲溶液,加水稀释至500mL,混匀。
10.2.6 盐酸(0.1mol/L):量取8.3mL盐酸,用水稀释至1000mL。
10.2.7 盐酸(2mol/L):量取167mL盐酸,用水稀释至1000mL。
10.2.8 盐酸(20%):量取20mL盐酸,用水稀释至100mL。
瓶中,避光保存。
10.2.10 盐酸萘乙二胺溶液(2g/L):称取0.2g盐酸萘乙二胺,溶于100mL水中,混匀,置棕色瓶中,
避光保存。
10.2.11 硫酸铜溶液(20g/L):称取20g硫酸铜,加水溶解,并稀释至1000mL。
10.2.12 硫酸镉溶液(40g/L):称取40g硫酸镉,加水溶解,并稀释至1000mL。
10.2.13 乙酸溶液(3%):量取冰乙酸3mL于100mL容量瓶中,以水稀释至刻度,混匀。
10.3 标准品
10.3.1 亚硝酸钠(NaNO2,CAS号:7632-00-0):基准试剂,或采用具有标准物质证书的亚硝酸盐标准
溶液。
10.4 标准溶液配制
10.4.1 亚硝酸钠标准溶液(200μg/mL,以亚硝酸钠计):准确称取0.1000g于110℃~120℃干燥恒
重的亚硝酸钠,加水溶解,移入500mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。
10.4.2 硝酸钠标准溶液(200μg/mL,以亚硝酸钠计):准确称取0.1232g于110℃~120℃干燥恒重
的硝酸钠,加水溶解,移入500mL容量瓶中,并稀释至刻度。
10.4.3 亚硝酸钠标准使用液(5.0μg/mL):临用前,吸取2.50mL亚硝酸钠标准溶液,置于100mL容
量瓶中,加水稀释至刻度。
10.4.4 硝酸钠标准使用液(5.0μg/mL,以亚硝酸钠计):临用前,吸取2.50mL硝酸钠标准溶液,置于
100mL容量瓶中,加水稀释至刻度。
11.1 天平:感量为0.1mg和1mg。
11.2 组织捣碎机。
11.3 超声波清洗器。
11.4 恒温干燥箱。
11.5 分光光度计。
11.6 镉柱或镀铜镉柱。
11.6.1 海绵状镉的制备:镉粒直径0.3mm~0.8mm。
将适量的锌棒放入烧杯中,用40g/L硫酸镉溶液浸没锌棒。在24h之内,不断将锌棒上的海绵状
镉轻轻刮下。取出残余锌棒,使镉沉底,倾去上层溶液。用水冲洗海绵状镉2次~3次后,将镉转移至
烧杯中,静置3h~4h,期间搅拌数次,以除去气泡。倾去海绵状镉中的溶液,并可按下述方法进行镉粒
镀铜。
11.6.2 镉粒镀铜:
将制得的镉粒置锥形瓶中(所用镉粒的量以达到要求的镉柱高度为准),加足量的盐酸(2mol/L)
浸没镉粒,振荡5min,静置分层,倾去上层溶液,用水多次冲洗镉粒。在镉粒中加入20g/L硫酸铜溶液
(每克镉粒约需2.5mL),振荡1min,静置分层,倾去上层溶液后,立即用水冲洗镀铜镉粒(注意镉粒要
始终用水浸没),直至冲洗的水中不再有铜沉淀。
11.6.3 镉柱的装填:
如图1所示,用水装满镉柱玻璃柱,并装入约2cm高的玻璃棉做垫,将玻璃棉压向柱底时,应将其
20cm[见图1装置b)],上面用1cm高的玻璃棉覆盖。若使用装置b),则上置一贮液漏斗,末端要穿过
橡皮塞与镉柱玻璃管紧密连接。
如无上述镉柱玻璃管时,可以25mL酸式滴定管代用,但过柱时要注意始终保持液面在镉层之上。
当镉柱填装好后,先用25mL盐酸(0.1mol/L)洗涤,再以水洗2次,每次25mL,镉柱不用时用水
封盖,随时都要保持水平面在镉层之上,不得使镉层夹有气泡。
说明:
1 ---贮液漏斗,内径35mm,外径37mm;
2 ---进液毛细管,内径0.4mm,外径6mm;
3 ---橡皮塞;
5、7---玻璃棉;
6 ---海面状镉;
8 ---出液毛细管,内径2mm,外径8mm。
图1 镉柱示意图
11.6.4 镉柱每次使用完毕后,应先以25mL盐酸(0.1mol/L)洗涤,再以水洗2次,每次25mL,最后
用水覆盖镉柱。
11.6.5 镉柱还原效率的测定:吸取20mL硝酸钠标准使用液,加入5mL氨缓冲液的稀释液,混匀后
注入贮液漏斗,使流经镉柱还原,用一个100mL的容量瓶收集洗提液。洗提液的流量不应超过
6mL/min,在贮液杯将要排空时,用约15mL水冲洗杯壁。冲洗水流尽后,再用15mL水重复冲洗,第
100mL时,从柱子下取出容量瓶,用水定容至刻度,混匀。取10.0mL还原后的溶液(相当10μg亚硝
酸钠)于50mL比色管中,以下按12.3自“吸取0.00mL、0.20mL、0.40mL、0.60mL、0.80mL、
1.00mL”起操作,根据标准曲线计算测得结果,与加入量一致,还原效率应大于95%为符合要求。
11.6.6 还原效率计算按式(2)计算:
X=
m1
10×100%
(2)
式中:
m1 ---测得亚硝酸钠的含量,单位为微克(μg);
10 ---测定用溶液相当亚硝酸钠的含量,单位为微克(μg)。
如果还原率小于95%时,将镉柱中的镉粒倒入锥形瓶中,加入足量的盐酸(2moL/L)中,振荡数分
钟,再用水反复冲洗。
12 分析步骤
12.1 试样的预处理
同5.1。
12.2 提取
12.2.1 干酪:称取试样2.5g(精确至0.001g),置于150mL具塞锥形瓶中,加水80mL,摇匀,超声
匀。于4℃放置20min,取出放置至室温,溶液经滤纸过滤,滤液备用。
12.2.2 液体乳样品:称取试样90g(精确至0.001g),置于250mL具塞锥形瓶中,加12.5mL饱和硼
砂溶液,加入70℃左右的水约60mL,混匀,于沸水浴中加热15min,取出置冷水浴中冷却,并放置至
室温。定量转移上述提取液至200mL容量瓶中,加入5mL106g/L亚铁氰化钾溶液,摇匀,再加入
5mL220g/L乙酸锌溶液,以沉淀蛋白质。加水至刻度,摇匀,放置30min,除去上层脂肪,上清液用滤
纸过滤,滤液备用。
12.2.3 乳粉:称取试样10g(精确至0.001g),置于150mL具塞锥形瓶中,加12.5mL50g/L饱和硼
砂溶液,加入70℃左右的水约150mL,混匀,于沸水浴中加热15min,取出置冷水浴中冷却,并放置至
室温。定量转移上述提取液至200mL容量瓶中,加入5mL106g/L亚铁氰化钾溶液,摇匀,再加入
纸过滤,弃去初滤液30mL,滤液备用。
12.2.4 其他样品:称取5g(精确至0.001g)匀浆试样(如制备过程中加水,应按加水量折算),置于
250mL具塞锥形瓶中,加12.5mL50g/L饱和硼砂溶液,加入70℃左右的水约150mL,混匀,于沸水
浴中加热15min,取出置冷水浴中冷却,并放置至室温。定量转移上述提取液至200mL容量瓶中,加
入5mL106g/L亚铁氰化钾溶液,摇匀,再加入5mL220g/L乙酸锌溶液,以沉淀蛋白质。加水至刻
度,摇匀,放置30min,除去上层脂肪,上清液用滤纸过滤,弃去初滤液30mL,滤液备用。
12.3 亚硝酸盐的测定
吸取40.0mL上述滤液于50mL带塞比色管中,另吸取0.00mL、0.20mL、0.40mL、0.60mL、
0.80mL、1.00mL、1.50mL、2.00mL、2.50mL亚硝酸钠标准使用液(相当于0.0μg、1.0μg、2.0μg、
与试样管中分别加入2mL4g/L对氨基苯磺酸溶液,混匀,静置3min~5min后各加入1mL2g/L盐
酸萘乙二胺溶液,加水至刻度,混匀,静置15min,用1cm比色杯,以零管调节零点,于波长538nm 处
测吸光度,绘制标准曲线比较。同时做试剂空白。
12.4 硝酸盐的测定
12.4.1 镉柱还原
12.4.1.1 先以25mL氨缓冲液的稀释液冲洗镉柱,流速控制在3mL/min~5mL/min(以滴定管代替
的可控制在2mL/min~3mL/min)。
12.4.1.2 吸取20mL滤液于50mL烧杯中,加5mLpH9.6~9.7氨缓冲溶液,混合后注入贮液漏斗,
使流经镉柱还原,当贮液杯中的样液流尽后,加15mL水冲洗烧杯,再倒入贮液杯中。冲洗水流完后,
的洗提液接近100mL时,取出容量瓶,用水定容刻度,混匀。
12.4.2 亚硝酸钠总量的测定
吸取10mL~20mL还原后的样液于50mL比色管中。以下按12.3自“吸取0.00mL、0.20mL、
0.40mL、0.60mL、0.80mL、1.00mL”起操作。
13 分析结果的表述
13.1 亚硝酸盐含量计算
亚硝酸盐(以亚硝酸钠计)的含量按式(3)计算:
X1=
m2×1000
V1
V0×
(3)
式中:
X1 ---试样中亚硝酸钠的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
m2 ---测定用样液中亚硝酸钠的质量,单位为微克(μg);
1000---转换系数;
m3 ---试样质量,单位为克(g);
V1 ---测定用样液体积,单位为毫升(mL);
结果保留2位有效数字。
13.2 硝酸盐含量的计算
硝酸盐(以硝酸钠计)的含量按式(4)计算:
X2=
m4×1000
m5×
V3
V2×
V5
-X1
÷×1.232(4)
式中:
X2 ---试样中硝酸钠的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
m4 ---经镉粉还原后测得总亚硝酸钠的质量,单位为微克(μg);
1000---转换系数;
m5 ---试样的质量,单位为克(g);
V3 ---测总亚硝酸钠的测定用样液体积,单位为毫升(mL);
V2 ---试样处理液总体积,单位为毫升(mL);
V4 ---经镉柱还原后样液总体积,单位为毫升(mL);
X1 ---由式(3)计算出的试样中亚硝酸钠的含量,单位为毫克每千克(mg/kg);
1.232---亚硝酸钠换算成硝酸钠的系数。
结果保留2位有效数字。
14 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。
15 其他
第二法中亚硝酸盐检出限:液体乳0.06mg/kg,乳粉0.5mg/kg,干酪及其他1mg/kg;硝酸盐检出
限:液体乳0.6mg/kg,乳粉5mg/kg,干酪及其他10mg/kg。
16 原理
用pH9.6~9.7的氨缓冲液提取样品中硝酸根离子,同时加活性炭去除色素类,加沉淀剂去除蛋白
质及其他干扰物质,利用硝酸根离子和亚硝酸根离子在紫外区219nm处具有等吸收波长的特性,测定
提取液的吸光度,其测得结果为硝酸盐和亚硝酸盐吸光度的总和,鉴于新鲜蔬菜、水果中亚硝酸盐含量
甚微,可忽略不计。测定结果为硝酸盐的吸光度,可从工作曲线上查得相应的质量浓度,计算样品中硝
酸盐的含量。
17 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯。水为GB/T 6682规定的一级水。
17.1 试剂
17.1.2 氨水(NH3·H2O,25%)。
17.1.3 亚铁氰化钾[K4Fe(CN)6·3H2O]。
17.1.4 硫酸锌(ZnSO4·7H2O)。
17.1.5 正辛醇(C8H18O)。
17.1.6 活性炭(粉状)。
17.2 试剂配制
17.2.1 氨缓冲溶液(pH=9.6~9.7):量取20mL盐酸,加入到500mL水中,混合后加入50mL氨水,
用水定容至1000mL。调pH至9.6~9.7。
17.2.2 亚铁氰化钾溶液(150g/L):称取150g亚铁氰化钾溶于水,定容至1000mL。
17.3 标准品
17.3.1 硝酸钾(KNO3,CAS号:7757-79-1):基准试剂,或采用具有标准物质证书的硝酸盐标准溶液。
17.4 标准溶液配制
17.4.1 硝酸盐标准储备液(500mg/L,以硝酸根计):称取0.2039g于110℃~120℃干燥至恒重的硝
酸钾,用水溶解并转移至250mL容量瓶中,加水稀释至刻度,混匀。此溶液硝酸根质量浓度为
500mg/L,于冰箱内保存。
17.4.2 硝酸盐标准曲线工作液:分别吸取0mL、0.2mL、0.4mL、0.6mL、0.8mL、1.0mL和1.2mL
硝酸盐标准储备液于50mL容量瓶中,加水定容至刻度,混匀。此标准系列溶液硝酸根质量浓度分别
为0mg/L、2.0mg/L、4.0mg/L、6.0mg/L、8.0mg/L、10.0mg/L和12.0mg/L。
18.1 紫外分光光度计。
18.2 分析天平:感量0.01g和0.0001g。
18.3 组织捣碎机。
18.4 可调式往返振荡机。
18.5 pH计:精度为0.01。
19 分析步骤
19.1 试样制备
选取一定数量有代表性的样品,先用自来水冲洗,再用水清洗干净,晾干表面水分,用四分法取样,
切碎,充分混匀,于组织捣碎机中匀浆(部分少汁样品可按一定质量比例加入等量水),在匀浆中加1滴
19.2 提取
称取10g(精确至0.01g)匀浆试样(如制备过程中加水,应按加水量折算)于250mL锥形瓶中,加
水100mL,加入5mL氨缓冲溶液(pH=9.6~9.7),2g粉末状活性炭。振荡(往复速度为200次/min)
30min。定量转移至250mL容量瓶中,加入2mL150g/L亚铁氰化钾溶液和2mL300g/L硫酸锌
溶液,充分混匀,加水定容至刻度,摇匀,放置5min,上清液用定量滤纸过滤,滤液备用。同时做空白
实验。
19.3 测定
根据试样中硝酸盐含量的高低,吸取上述滤液2mL~10mL于50mL容量瓶中,加水定容至刻
度,混匀。用1cm石英比色皿,于219nm处测定吸光度。
将标准曲线工作液用1cm石英比色皿,于219nm处测定吸光度。以标准溶液质量浓度为横坐
标,吸光度为纵坐标绘制工作曲线。
20 结果计算
硝酸盐(以硝酸根计)的含量按式(5)计算:
X=ρ
×V6×V8
m6×V7
(5)
式中:
ρ ---由工作曲线获得的试样溶液中硝酸盐的质量浓度,单位为毫克每升(mg/L);
V6---提取液定容体积,单位为毫升(mL);
V8---待测液定容体积,单位为毫升(mL);
m6---试样的质量,单位为克(g);
V7---吸取的滤液体积,单位为毫升(mL)。
结果保留2位有效数字。
21 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。
22 其他

GB 5009.33-2016
GB
NATIONAL STANDARD OF THE
PEOPLE’S REPUBLIC OF CHINA
National Food Safety Standard -
Determination of Nitrite and Nitrate in Foods
ISSUED ON. DECEMBER 23, 2016
IMPLEMENTED ON. JUNE 23, 2017
Issued by. National Health and Family Planning Commission of the
People’s Republic of China;
State Food and Drug Administration of the People’s Republic
of China.
Table of Contents
Foreword ... 3 
1 Scope ... 4 
Method I Ion Chromatography ... 4 
2 Principle ... 4 
3 Reagents and Materials ... 4 
4 Instruments and Equipment ... 5 
5 Analytical Procedures ... 6 
6 Expression of Analysis Results ... 8 
7 Precision ... 9 
8 Others ... 9 
Method II Spectrophotometry ... 9 
9 Principle ... 9 
10 Reagents and Materials... 10 
11 Instruments and Equipment ... 12 
12 Analytical Procedures ... 15 
13 Expression of Analysis Results ... 17 
14 Precision ... 18 
15 Others ... 18 
Method III Determination of Nitrate in Vegetables and Fruits - UV
Spectrophotometry ... 18 
16 Principle ... 18 
17 Reagents and Materials... 19 
18 Instruments and Equipment ... 20 
19 Analytical Procedures ... 20 
20 Calculation Result ... 21 
21 Precision ... 21 
22 Others ... 21 
Appendix A Chromatogram of Nitrite and Nitrate ... 22
National Food Safety Standard -
Determination of Nitrite and Nitrate in Foods
1 Scope
This Standard specifies the method of determining nitrite and nitrate in foods.
This Standard is applicable to the determination of nitrite and nitrate in foods.
Method I -- Ion Chromatography
2 Principle
Precipitate protein and remove fat from the sample; adopt the corresponding method
to extract and purify; take potassium hydroxide solution as the eluent; adopt anion
exchange column for separation; take conductance detector or UV detector for
detection. Determine the nature with the retention time and quantify with the external
standard method.
3 Reagents and Materials
Unless otherwise indicated, the reagents adopted under this method are of analytical
purity. The water is first-grade water as specified in GB/T 6682.
3.1 Reagents
3.1.1 Acetic acid (CH3COOH).
3.1.2 Potassium hydroxide (KOH).
3.2 Preparation of Reagents
3.2.1 Acetic acid solution (3%). weigh-take 3 mL of acetic acid, place it in 100 mL
volumetric flask. Add water to dilute to the constant volume; mix it up.
3.2.2 Potassium hydroxide solution (1 mol/L). weigh-take 6 g of potassium hydroxide;
dissolve it in cold water that’s newly boiled; dilute to 100 mL; mix it up.
3.3 Standards
volumetric flask; add water to dilute to the constant volume, mix it up. Use filter paper
to filter the solution; take part of the solution, then, centrifuge for 15 min under 10,000
r/min. Reserve the supernatant for later usage.
5.2.2 Meat, egg, fish and other products. weigh-take 5 g (accurate to 0.001 g) of
sample homogenate, place it in 150 mL conical flask with a plug; add 80 mL of water.
completely dispersed solid phase. Place it in water bath at 75 °C for 5 min; take it out
and wait till it reaches the room temperature. Quantitatively transfer it into 100 mL
volumetric flask; add water to dilute to the constant volume, mix it up. Use filter paper
to filter the solution; take part of the solution, then, centrifuge for 15 min under 10,000
r/min. Reserve the supernatant for later usage.
5.2.3 Marinated fish, marinated meat and other marinated products. weigh-take 2 g
(accurate to 0.001 g) of sample homogenate, place it in 150 mL conical flask with a
plug; add 80 mL of water. Start ultrasonic extraction for 30 min; shake once every 5
min, then, maintain the completely dispersed solid phase. Place it in water bath at
transfer it into 100 mL volumetric flask; add water to dilute to the constant volume, mix
it up. Use filter paper to filter the solution; take part of the solution, then, centrifuge for
15 min under 10,000 r/min. Reserve the supernatant for later usage.
5.2.4 Dairy products. weigh-take 10 g (accurate to 0.01 g) of sample, place it in 100
mL conical flask with a plug; add 80 mL of water, mix it up. Start ultrasonic extraction
for 30 min. Add 2 mL of 3% acetic acid solution, place it under 4 °C for 20 min; take it
out and wait till it reaches the room temperature. Add water to dilute to the constant
volume. Use filter paper to filter the solution; reserve the filtrate for later usage.
5.2.5 Milk powder and cottage cheese. weigh-take 2.5 g (accurate to 0.01 g) of
ultrasonic extraction for 30 min. Take it out and wait till it reaches the room
temperature. Quantitatively transfer it into 100 mL volumetric flask; add 2 mL of 3%
acetic acid solution. Add water to dilute to the constant volume. Place it under 4 °C for
20 min; take it out and wait till it reaches the room temperature. Use filter paper to filter
the solution; reserve the filtrate for later usage.
5.2.6 Take approximately 15 mL of the above-mentioned reserved solution; adopt
0.22 μm water filter needle filter and C18 column to remove 3 mL of supernatant (if
chloride is >100 mg/L, adopt needle filter, C18 column, Ag column and Na column to
remove 7 mL of supernatant); gather the remaining eluent for detection.
activation of C18 column (1.0 mL), Ag column (1.0 mL) and Na column (1.0 mL).
before the usage of C18 column (1.0 mL), respectively inject 10 mL of methanol and 15
mL of water; start static activation for 30min. Inject 10 mL of water to Ag column (1.0
mL) and Na column (1.0 mL); start static activation for 30 min.
add 100 mL of water; mix it up. Add 65 mL of ammonia; add water to dilute to 1,000
mL; mix it up. Adjust pH to 9.6~9.7.
10.2.5 Diluent of ammonia buffer solution. weigh-take 50 mL of pH 9.6~9.7 ammonia
buffer solution; add water to dilute to 500 mL; mix it up.
10.2.6 Hydrochloric acid (0.1 mol/L). weigh-take 8.3 mL of hydrochloric acid; add
10.2.7 Hydrochloric acid (2 mol/L). weigh-take 167 mL of hydrochloric acid; add water
to dilute to 1,000 mL.
10.2.8 Hydrochloric acid (20%). weigh-take 20 mL of hydrochloric acid; add water to
dilute to 100 mL.
10.2.9 Sulfanilic acid solution (4 g/L). weigh-take 0.4 g of sulfanilic acid; dissolve it in
100 mL of 20% hydrochloric acid; mix it up. Place it in brown bottle; keep away from
light.
10.2.10 Naphthalene ethylenediamine hydrochloride solution (2 g/L). weigh-take 0.2 g
of naphthalene ethylenediamine hydrochloride; dissolve it in 100 mL of water; mix it
10.2.11 Copper sulfate solution (20 g/L). weigh-take 20 g of copper sulfate; add water
to dilute it to 1,000 mL.
10.2.12 Cadmium sulfate solution (40 g/L). weigh-take 40 g of cadmium sulfate; add
water to dilute it to 1,000 mL.
10.2.13 Acetic acid solution (3%). weigh-take 3 mL of glacial acetic acid; place it in
100 mL volumetric flask. Add water to dilute to the constant volume; mix it up.
10.3 Standards
10.3.1 Sodium nitrite (NaNO2, CAS No.. 7632-00-0). reference reagents, or standard
nitrite solution supported by Reference Material Certificate.
nitrate solution supported by Reference Material Certificate.
10.4 Preparation of Standard Solutions
10.4.1 Standard solution of sodium nitrite (200 μg/mL, calculated by sodium nitrite).
accurately weigh-take 0.1000 g of sodium nitrite that’s dried to constant weight under
110 °C~120 °C. Add water to dissolve it; transfer it to 500 mL volumetric flask. Add
water to dilute to the constant volume; mix it up.
10.4.2 Standard solution of sodium nitrate (200 μg/mL, calculated by sodium nitrate).
Keys.
1 Liquid funnel, internal diameter. 35 mm, external diameter. 37 mm;
3 Rubber stopper;
4 Cadmium column glass tube, internal diameter. 12 mm, external diameter. 16 mm;
5,7 Glass wool;
6 Spongy cadmium;
8 Outlet capillary, internal diameter. 2 mm, external diameter. 8 mm.
Figure 1 -- Cadmium Column Sketch
11.6.4 After each usage of cadmium column, use 25 mL of hydrochloric acid (0.1
mol/L) to wash it, then, use water to wash it for 2 times (25 mL of water for each time).
In the end, cover the cadmium column with water.
standard sodium nitrate working fluid, add 5 mL of diluent of ammonia buffer; mix it up
and inject it into the liquid funnel and pass the cadmium column for reduction. Use a
100 mL volumetric flask to gather the eluent. The flow rate of the eluent shall not
exceed 6 mL/min. When the liquid storage cup is about to be drained, use
approximately 15 mL of water to rinse the cup. After the water is drained, use extra 15
mL of water to rinse it repeatedly. After the water is drained for the second time, fill the
cup up with water; let it pass the cadmium column at the largest flow rate. When the
eluent in the volumetric flask is approaching 100 mL, take out the volumetric flask
from the bottom of the column. Add water to the constant volume; mix it up. Take 10.0
colorimetric tube. Follow the steps described in 12.3 from “extract 0.00 mL, 0.20 mL,
0.40 mL, 0.60 mL, 0.80 mL, 1.00 mL...”. Calculate the result in accordance with the
standard curve line. If it is consistent with the added amount and the reduction
efficiency is > 95%, then, it can satisfy the requirements.
11.6.6 The reduction efficiency shall be calculated in accordance with Formula (2).
Where.
X - Reduction efficiency, expressed in %;
m1 - The content of sodium nitrite, expressed in (μg);
10 - The content of sodium nitrite in the solution to be determined, expressed in (μg).
200 mL volumetric flask; add 5 mL of 106 g/L potassium ferrocyanide solution; mix it
up. Add 5 mL of 220 g/L zinc acetate solution to precipitate protein. Add water to the
constant volume, mix it up; place it evenly for 30 min. Remove the supernatant fat;
use filter paper to filter the supernatant; get rid of 30 mL of initial filtrate, and reserve
the filtrate for later usage.
12.3 Determination of Nitrite
Extract 40.0 mL of the above-mentioned filtrate and place it in 50 mL colorimetric tube
with a plug. Extract 0.00 mL, 0.20 mL, 0.40 mL, 0.60 mL, 0.80 mL, 1.00 mL, 1.50 mL,
2.00 mL and 2.50 mL of standard working solution of sodium nitrite (equivalent to 0.0
nitrite). Place it respectively in 50 mL colorimetric tube with a plug. Add 2 mL of 4 g/L
sulfanilic acid solution respectively to the standard tube and sample tube, mix it up;
place it evenly for 3 min~5 min. Respectively add 1 mL of 2 g/L naphthalene
ethylenediamine hydrochloride solution; add water to the constant volume, mix it up.
Place it evenly for 15 min. Adopt 1 cm colorimetric cup; adjust the zero point through
the zero tube; measure absorbance at the wavelength of 538 nm. Draw a standard
curve for comparison. Simultaneously, prepare blank reagent.
12.4 Determination of Nitrate
12.4.1 Cadmium Column Reduction
control the flow rate at 3 mL/min~5 mL/min (2 mL/min~3 mL/min if it is replaced by
burette).
12.4.1.2 Extract 20 mL of filtrate and place it in 50 mL beaker. Add 5 mL of pH 9.6~9.7
ammonia buffer solution, mix it up; inject it into liquid funnel and pass the cadmium
column for reduction. After the sample solution is drained in the cup, add 15 mL of
water to rinse the beaker; pour into the cup again. After the water is drained, use 15
15 mL of water to rinse again. When the water is about to be drained for the second
time, fill up the cup with water and pass the column at the largest flow rate. When the
eluent in the volumetric flask is approaching 100 mL, take out the volumetric flask;
   
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