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YY/T 1497-2016

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YY/T 1497-2016 英文版 430 购买 现货,9秒内自动发货PDF,有增值税发票。 医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试方法 Phi-X174噬菌体测试方法 有效

   
标准编号: YY/T 1497-2016 (YY/T1497-2016)
中文名称: 医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试方法 Phi-X174噬菌体测试方法
英文名称: Evaluation test method for the viral filtration efficiency(VFE)of medical protective face mask materials -- Test method using Phi-X174 bacteriophage
行业: 医药行业标准 (推荐)
中标分类: C48
字数估计: 9,934
发布日期: 2016-07-29
实施日期: 2017-06-01
标准依据: State Food and Drug Administration Notice 2016 (No.129)
提出机构: 国家食品药品监督管理总局
发布机构: 国家食品药品监督管理总局

YY/T 1497-2016
Evaluation test method for the viral filtration efficiency(VFE)of medical protective face mask materials--Test method using Phi-X174 bacteriophage
ICS 11.140
C48
中华人民共和国医药行业标准
医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试
方法 Phi-X174噬菌体测试方法
2016-07-29发布
2017-06-01实施
国家食品药品监督管理总局 发 布
前言
本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。
本标准由国家食品药品监督管理总局提出。
本标准由国家食品药品监督管理局北京医疗器械质量监督检验中心归口。
本标准起草单位:北京市医疗器械检验所、青岛众瑞智能仪器有限公司。
本标准主要起草人:刘思敏、金国胜、李成志、潘四春。
医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试
方法 Phi-X174噬菌体测试方法
1 范围
本标准规定了用Phi-X174噬菌体悬浮液为替代微生物,对医用防护口罩或口罩材料进行病毒过滤
效率的测试方法。
本标准适用于有病毒过滤效率评价要求的医用防护口罩或口罩材料。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T 6682-2008 分析实验室用水规格和试验方法
3 术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1
病毒 virus
无独立的代谢系统,只能在活的宿主细胞内复制的具有感染性的微小生物。
3.2
噬菌体 bacteriophage
能感染细菌的一种病毒。
注:本试验方法中,噬菌体即指Phi-X174。Phi-X174对人类不是致病病毒,但可用于模拟对人类有致病性的病毒。
3.3
溶解 lysis
整个细菌细胞裂解或破坏。
注:本试验方法中,大肠杆菌作为宿主细胞因Phi-X174侵入而引起溶解。
3.4
噬菌斑 plaque
(病毒学)理论上由单个活病毒感染、溶解宿主细胞而形成的清晰可见区域。
注:本试验方法中,噬菌斑即指琼脂层上E.coliC的菌落中的清晰可见区域,理论上是单个存活的Phi-X174感染
和溶解细菌的结果。
3.5
空斑形成单位 plaque-formingunit
PFU
通过感染和溶解琼脂上层的细菌而产生噬菌斑的病毒粒子。
3.6
替代微生物 surrogatemicrobe
用于模拟致病性微生物的模式微生物。
注:本试验方法中,替代微生物即指噬菌体Phi-X174。
3.7
病毒过滤效率 viralfiltrationefficiency
VFE
在规定流量下,测试样品对病毒悬浮粒子滤除的百分数。
4 测试方法
4.1 测试原理
使带有一定病毒浓度的气溶胶,以一定流速穿过样品,通过测定穿透样品前、后气溶胶中的病毒数
量,计算该样品对病毒的过滤效率。
4.2 仪器和实验试剂
4.2.1 采样器
AGI-30液体冲击式采样器(每通道2个采样器),能承受最大12.5L/min流量冲击。
4.2.2 病毒过滤效率测试设备
病毒过滤效率测试设备(见图1):采用芝加哥式原理的气溶胶发生器制备测试用病毒气溶胶。根
据喷雾器情况,调试气溶胶产生速率(一般6L/min~8L/min),使所产生气溶胶的平均颗粒直径
(MPS)为(3.0±0.3)μm,气溶胶分布的几何标准差应不超过1.5。连接管路应保证气溶胶从上至下垂
直撞击水平放置的样品,样品采样区为圆形,直径为(8.3±0.1)cm,测试医用防护口罩用拱形网支撑,测
试口罩材料用平面网支撑(见图2)。气溶胶通过样品后即进入2个AGI-30液体冲击式采样器(4.2.1)。
每个采样器用20mL无菌蛋白胨水收集穿过样品的病毒颗粒。液体冲击式采样器的出口通过单独的
管道与气体流量表相连接来控制气体流速。经过气泵抽吸,气体以25L/min的速度进入整个测试系
统。在实验开始前,所有能与病毒气溶胶接触的系统部件均应经121℃压力蒸汽灭菌20min。测试设
备可采用符合本标准规定的等效设备,采用单通道或双通道均可实施检验。
说明:
①---气溶胶发生器;
②---样品;
③---液体冲击式采样器;
④---流量表;
⑤---气泵。
4.2.3 其他设备
4.2.3.1 气源:能提供至少50kPa的气压。
4.2.3.2 培养箱:能保持温度在(36±1)℃。
4.2.3.3 水浴锅:能获得(45±2)℃的温度。
4.2.3.4 涡流混匀器。
4.2.3.5 冰箱:能维持温度在(5±3)℃。
4.2.3.6 压力蒸汽灭菌器:能维持温度在(121±1)℃。
4.2.3.7 计时器,准确度至少为1s。
4.2.3.8 振荡器。
4.2.3.10 接种环。
4.2.3.11 分光光度计:能在640nm处测量吸光度。
4.2.3.12 离心机:能提供10000r/min的转速。
4.2.3.13 0.45μm过滤膜。
单位为毫米
图2 拱形、平面形支撑网
4.2.4 实验试剂
4.2.4.1 噬菌体营养肉汤(Phi-X174)配方如下:
胰蛋白胨 8g
氯化钙 0.2g
加水至1000mL
121℃压力蒸汽灭菌20min后,pH值为7.3±0.2。
4.2.4.2 下层琼脂配方如下:
琼脂 15g
营养肉汤 8g
氯化钾 5g
氯化钙 0.2g
加水至1000mL
4.2.4.3 上层琼脂配方如下:
琼脂 7g
营养肉汤 8g
氯化钾 5g
氯化钙 0.2g
加水至1000mL
121℃压力蒸汽灭菌20min后,pH值为7.3±0.2。
4.2.4.4 0.1%无菌蛋白胨水。
4.2.4.5 噬菌体Phi-X174(ATCC13706-B1),浓度至少为1.0×108PFU/mL。
4.2.4.7 试验用水,至少符合 GB/T 6682-2008中规定的3级水。
4.3 预处理
每一测试样品应在温度为(21±5)℃,相对湿度为(60±10)%的环境中放置至少24h。
4.4 试验步骤
4.4.1 噬菌体悬浮液的制备程序
噬菌体悬浮液的制备的程序如下:
a) 将10mL~25mL噬菌体营养肉汤(4.2.4.1)加入装有250mL三角瓶中,用接种环将大肠
杆菌接种于该营养肉汤中,在温度为(36±1)℃,转速为(225±25)r/min的条件下培养
过夜;
的三角瓶中。在温度为(36±1)℃,转速为(225±25)r/min的条件下培养。大约3h后,细菌
增殖至浓度为(3±1)×108CFU/mL,与此对应的培养液吸光度值为0.3~0.5(640nm);
c) 取浓度约1.0×106PFU/mL的噬菌体液1mL加入到一个无菌的洁净试管中,再向试管加入
上述大肠杆菌悬液4mL,振荡混匀,再加入25mL温度为(45±2)℃的上层琼脂培养基
(4.2.4.3),振荡混匀;
d) 将上述混匀后的上层琼脂培养基倒入直径为150mm的无菌洁净平皿中,置于(36±1)℃条件
下,培养3h~4h;
e) 培养结束后,收集该上层琼脂培养基于洁净的无菌离心管中,在10000r/min下离心20min
以去掉细胞碎片,将上清液倒入洁净的无菌试管中;
g) 测定噬菌体溶液的浓度,并置于(4~8)℃条件下保存,此时测得的噬菌体浓度一般在(2.0±2)
×108PFU/mL的范围内;
h) 用0.1%无菌蛋白胨水将噬菌体培养液稀释至测试所需的浓度以制得噬菌体挑战悬浮液。
4.4.2 试验程序
气溶胶发生器的液体容器中加入适量检测用噬菌体挑战悬浮液。噬菌体浓度通过4.4.1所述方法
进行控制,使其约为1.0×108PFU/mL。每次测试前,用净化的空气灌注整个系统约45s使气路平衡
后,开启气溶胶发生器,向喷雾器输送噬菌体悬液的时间设定为1min,空气压力和采样器运行时间设
定为2min,在2个AGI-30液体冲击采样器中分别放入20mL0.1%无菌蛋白胨水收集噬菌体气溶胶,
形成样品组试验液和阳性对照组试验液。采样器阳性对照值按照5.1方法计算,应不小于106PFU,否
4.4.3 试验液的定量测试
将样品组试验液梯度稀释至10-3,阳性对照组试验液梯度稀释至10-7,用下述程序定量测试稀释
后的试验液(4.4.2所得)中噬菌体的数目:
a) 移取2.5mL融化的无菌上层琼脂培养基到已灭菌的试管中,并保持上层琼脂培养基温度在
(45±2)℃;
b) 将盛有上层琼脂培养基的试管从热源上移走,迅速加入0.5mL稀释后的试验液,以制备接
种管;
c) 每个接种管中加入100μL过夜放置的大肠杆菌培养物;
d) 将试管充分混匀,倒在下层琼脂培养基平板的表面上;
f) 让琼脂凝固,并在(36±1)℃培养,直至产生肉眼清晰可见的噬菌斑,通常约3h~4h;
g) 培养后,对噬菌斑在30PFU~300PFU范围内的平皿进行计数,若最小稀释倍数的噬菌斑数
小于30,则按实际数量记录,若无噬菌斑,则噬菌斑记为“<1”。
5 结果计算
5.1 按式(1)计算采样器噬菌体阳性对照计算结果:
Y=
0.5×40
(1)
式中:
c---阳性对照组试验液2个平板噬菌斑计数平均值×相应稀释倍数,PFU。
分别计算3个采样器阳性对照值。
5.2 按式(2)计算病毒过滤效率结果:
VFE=
c-T
c ×100%
(2)
式中:
VFE---病毒过滤效率,%;
T ---试验样品组试验液2个平板噬菌斑计数平均值×相应稀释倍数,PFU。
分别计算3个试验样品的病毒过滤效率。
报出结果应选取三个平行试样结果的最小值。
6 试验报告
报告应至少包括下列内容:
a) 引用本标准的说明;
b) 试验材料信息(制造商、供应商、批号、材质及到样日期);
c) 样品的预处理条件(例如,温度、相对湿度);
d) 试验菌种名称、编号及浓度;
f) 试验人员和试验日期;
g) 任何偏离本标准的情况。
参 考 文 献
[1] YY0469-2011 医用外科口罩
[2] YY/T 0689-2008 血液和体液防护装备 防护服材料抗血液传播病原体穿透性能测试
Phi-X174噬菌体试验方法

YY/T 1497-2016
PHARMACEUTICAL INDUSTRY STANDARD
OF THE PEOPLE’S REPUBLIC OF CHINA
ICS 11.140
C 48
Evaluation Test Method for the Viral Filtration
Efficiency (VFE) of Medical Protective Face Mask
Materials - Test Method Using Phi-X174 Bacteriophage
医用防护口罩材料病毒过滤效率评价测试方法
Phi-X174 噬菌体测试方法
ISSUED ON: JULY 29, 2016
IMPLEMENTED ON: JUNE 1, 2017
Issued by: China Food and Drug Administration
Table of Contents
Foreword ... 3 
1 Scope ... 4 
2 Normative References ... 4 
3 Terms and Definitions ... 4 
4 Test Methods ... 5 
5 Calculation of Results ... 11 
6 Test Report ... 11 
Bibliography ... 13 
Evaluation Test Method for the Viral Filtration
Efficiency (VFE) of Medical Protective Face Mask
Materials - Test Method Using Phi-X174 Bacteriophage
1 Scope
This Standard stipulates the method of using Phi-X174 bacteriophage suspension
liquid as a surrogate microbe to test the viral filtration efficiency (VFE) of medical
protective face masks or face mask materials.
This Standard is applicable to medical protective face masks or face mask materials
which have requirements for the evaluation of the viral filtration efficiency (VFE).
2 Normative References
The following documents are indispensable to the application of this document. In
terms of references with a specified date, only versions with a specified date are
applicable to this document. In terms of references without a specified date, the latest
version (including all the modifications) is applicable to this document.
GB/T 6682-2008 Water for Analytical Laboratory Use - Specification and Test Methods
3 Terms and Definitions
The following terms and definitions are applicable to this document.
3.1 Virus
Virus refers to infectious micro-organisms that have no independent metabolic system
and can only replicate in living host cells.
3.2 Bacteriophage
Bacteriophage refers to a type of virus that can infect bacteria.
NOTE: in this test method, bacteriophage refers to Phi-X174. Phi-X174 is not pathogenic
virus to human beings, but it can be used to mimic pathogenic viruses to human
beings.
3.3 Lysis
Lysis refers to lysis or destruction of whole bacterial cells.
NOTE: in this test method, lysis of Escherichia coli (as host cell) is caused by Phi-X174
invasion.
3.4 Plaque
Plaque refers to a clearly visible area theoretically (virology) formed by a single live
virus’s infection and lysis of host cells.
NOTE: in this test method, plaque refers to a clearly visible area in the colonies of E.coli
C on the agar layer. Theoretically speaking, it is the result of a single live Phi-
X174’s infection and lysis of bacteria.
3.5 Plaque-forming Unit
PFU
Plaque-forming unit refers to plaque-producing virions through the infection and lysis
of bacteria on the upper layer of agar.
3.6 Surrogate Microbe
Surrogate microbe refers to mode microbe used to mimic pathogenic microbes.
NOTE: in this test method, surrogate microbe refers to bacteriophage Phi-X174.
3.7 Viral Filtration Efficiency
VFE
Viral filtration efficiency refers to the percentage of virus suspended particles being
filtered by test sample at a specified flow rate.
4 Test Methods
4.1 Test Principle
flow rate. Through the determination of the number of viruses in the aerosol before and
after penetrating the sample, calculate the viral filtration efficiency of the sample.
4.2 Instruments and Test Reagents
4.2.1 Sampler
AGI-30 liquid impact sampler (2 samplers in each channel), which is able to endure a
maximum flow impact of 12.5 L/min.
4.2.4.1 The formula of bacteriophage nutrient broth (Phi-X174) is as follows:
Tryptone 8 g
Potassium chloride 5 g
Add water to 1,000 mL
At 121 °C, after conducting pressure steam sterilization for 20 min, pH value is 7.3 ±
0.2.
4.2.4.2 The formula of the lower layer of agar is as follows:
Agar 15 g
Nutrient broth 8 g
Potassium chloride 5 g
Calcium chloride 0.2 g
Add water to 1,000 mL
0.2.
4.2.4.3 The formula of the upper layer of agar is as follows:
Agar 7g
Nutrient broth 8 g
Potassium chloride 5 g
Calcium chloride 0.2 g
Add water to 1,000 mL
At 121 °C, after conducting pressure steam sterilization for 20 min, pH value is 7.3 ±
0.2.
4.2.4.5 Bacteriophage Phi-X174 (ATCC 13706-B1), whose concentration shall at least
be 1.0  108 PFU/mL.
4.2.4.6 Escherichia coli (ATCC 13706).
h) Use 0.1% sterile peptone water to dilute the bacteriophage culture solution to
the concentration required for tests, so as to prepare bacteriophage
challenging suspension liquid.
4.4.2 Test procedures
Add a proper amount of bacteriophage challenging suspension liquid for detection into
the fluid container of the aerosol generator. The concentration of bacteriophage is
Before each test, use purified air to fill the whole system for around 45 s, so as to
balance the air channel. Then, activate the aerosol generator; set the time of delivering
the bacteriophage suspension liquid to the atomizer to be 1 min; set the run time of air
pressure and the sampler to be 2 min. Respectively add 20 mL of 0.1% sterile peptone
water to the two AGI-30 liquid impact samplers to collect bacteriophage aerosol; form
test solutions of the sample group and the positive control group. The positive control
value of the sampler is calculated in accordance with the method in 5.1; it shall be not
less than 106 PFU, otherwise, the concentration of bacteriophage shall be adjusted.
Respectively repeat the test of the sample group and the positive control group for 3
4.4.3 Quantitative test of test solutions
Conduct gradient dilution of the test solution in the sample group to 10-3; conduct
gradient dilution of the test solution in the positive control group to 10-7. Adopt the
following procedure to quantitatively test the number of bacteriophages in the test
solution (obtained in 4.4.2) after the dilution:
a) Transfer 2.5 mL of molten sterile upper layer of agar culture medium to a
sterilized test tube; maintain the temperature of the upper layer of agar culture
medium at (45 ± 2) °C;
b) Remove the test tube that contains the upper layer of agar culture medium
so as to prepare inoculation tubes;
c) Add 100 μL of Escherichia coli culture, which has been placed overnight, to
each inoculation tube;
d) Thoroughly mix the test tube; pour it onto the surface of the plate of the lower
layer of agar culture medium;
e) In terms of test solution collected from each test sample and control sample,
prepare 2 plates (diameter of the plate: 90 mm);
f) Solidify agar; cultivate it at (36 ± 1) °C, till plaque that is clearly visible to the
naked eye is generated (generally, around 3 h ~ 4 h);
   
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